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Nom de la plateforme
Plate-forme de Biothérapies
Université Lille 2
Faculté de Médecine, Pôle Recherche, 3ème étage Est
Adresse / Téléphone Place de Verdun 59 045 Lille
+33 (0) 3 20 62 34 06
Laboratoire
d'accueil - locaux
Date de création
En activité
Equipes
* UMR 1190 (Recherche Translationnelle sur le diabète)
2
* Université Lille 2: superficie totale de 250m , comprennent 3 zones de production de 30
m2 Classe C et 3 salles blanches de 12m2 Classe D, dédiées aux phases de recherche et
développement.
2008
oui
Responsable scientifique: Pr. Julie Kerr-conte ([email protected])
Equipe :
Rimed Ezzouaoui, Ingénieur qualité ([email protected])
Sandrine Belaich, Ingénieur d'études ([email protected])
Lukowiak Bruno, Ingénieur d’études ([email protected])
Isanga Aluka, Technicien de laboratoire ([email protected])
Corinne Courcol, Assistante
Description
La plate-forme de Biothérapies est une structure de Zones à Atmosphère Contrôlée
(ZAC) opérationnelle et réglementairement conforme dédiée à l'isolement de pancréas
humains dans le but de greffes d'ilôts.
Activités
(1) Production de Préparations de Thérapie Cellulaire (PTC) à but thérapeutique
(2) Support technique et validation de protocoles cliniques en phase de développement
3 salles blanches
200 m²
Environnement maîtrisé: SAS, filtration d’air, surpression, vêtements, double emballage
Equipements
1 salle R&D
35 m²
Dédiée aux modèles animaux
Photos
Partenaires
institutionnels
Financeurs
Nom de la plateforme
Plate-forme de Cytométrie et Tri Cellulaire
Bâtiment Institut pour le Recherche sur le Cancer de Lille (IRCL)
Adresse / Téléphone Place de Verdun 59 045 LILLE
+ 33 (0)3 20 16 92 26
Laboratoire
Institut de Recherche sur le Cancer de Lille
d'accueil - locaux
Date de création
2000
En activité
oui
Responsable scientifique : Dr Thierry Idziorek
Personnels techniques :
Equipes
Nathalie Jouy, Ingénieur d'Etudes
Emeline Machez, Assistant Ingénieur
Description
Le Service est localisé au 1er étage de l’Institut pour la Recherche sur le Cancer de Lille et est
ouvert à toutes les équipes de recherche du site et aux laboratoires et industries extérieurs.
La cytométrie en flux permet une caractérisation multiparamétrique des propriétés physiques et
fonctionnelles d’une population d'éléments (cellules, bactéries, billes...) : taille, granulasité,
intensité de fluorescence. Cette technique permet d'analyser rapidement un grand nombre
d'évènements et de mettre en évidence leur hétérogénéité.
Le tri cellulaire est une fonction supplémentaire qui permet de purifier la ou les populations
d’intérêt.
Cette technique peut être :
- Semi-quantitative (comparaison d’intensité de marquage entre différentes populations),
- Quantitative (utilisation de standards pour avoir des valeurs absolues d’expression de marqueur
ou de taille par exemple),
- Préparatoire (un cytomètre-trieur permet de séparer un échantillon en sous-populations selon
des critères de fluorescence choisis par l’expérimentateur)
Activités
Cette technique permet d'étudier :
- des marqueurs phénotypiques de surfaces et intracellulaires
- les différents phases et les perturbations du cycle cellulaire
- les taux de transfection
- la viabilité, la mort cellulaire et l'apoptose
- certaines activités enzymatiques
Le tri cellulaire permet isolement de populations sur les critères listés précédemment, y compris
les évènements rares telle les cellules souches. Avec 4 voiesd'isolement, il est ainsi de purifier
jusqu'4 sous-populations cellulaires en tubes et sur lames. Le clonage de 1 cellules par puits peut
être fait sur des plaques de 96 et 384 puits.
Equipements
3 analyseurs:
Cyan ADP LX9 (Beckman Coulter) : 3 lasers, 9 couleurs + acquisition haute vitesse
Cell Lab Quanta (Beckman Coulter) : 2 lasers, 3 couleurs + numération absolue
LSR Fortessa Fx20 (BD Parmingen) : 5 lasers, 18 couleurs
1 trieur de cellules Aria III (BD Pharmingen):
5 lasers, 20 couleurs
4 voies de tri en tubes de 1,5 à 5ml, 2 voies en tube 15ml, sur plaques de 24 à 384 puits
Photos
Partenaires
institutionnels
Réseaux
Financeurs
Nom de la plateforme
Plate-forme de Microscopie Photonique
Université Lille 2
Faculté de Médecine, Pôle Recherche
Adresse / Téléphone
Place de Verdun 59 045 LILLE
+ 33 (0)3 20 62 34 93
Laboratoire
Université Lille 2
d'accueil - locaux
Date de création
2010
En activité
oui
Responsable scientifique : Dr Valérie Mitchell
Equipes
Responsable technique : Meryem Tardivel, Ingénieur d'Etudes
Description
La plate-forme d’imagerie cellulaire BICEL-IFR114, labélisée IBISA (Infrastructures en Biologie
Santé et Agronomie), propose une activité de formation, de soutien, de suivi et de conseil à une
large communauté scientifique présente au sein du site mais aussi à des entités nationales et
internationales qu’ils s’agissent d’organismes académiques ou d’entreprises privées.
Les principales missions de la plate-forme :
Accueillir les scientifiques, discuter de leurs projets et les orienter vers les équipements les
plus adaptés à leur problématique.
Accompagner les utilisateurs dans la réalisation de leurs acquisitions et les aider à
analyser puis interpréter leurs résultats.
Procurer une formation sur-mesure aux utilisateurs pour les accompagner vers l’autonomie.
Assurer une veille technologique, développer de nouvelles techniques et des mises au
point spécifiques à chaque protocole.
Garantir l’exactitude des résultats obtenus et leur reproductibilité grâce à de nombreux
tests de métrologie et à la maintenance constructeur.
Activités
Les études menées à partir des équipements de la plate-forme tels que des microscopes
confocaux, des microscopes conventionnels ou des vidéo-microscopes ont pour but de localiser,
par des techniques d’immunofluorescence, de protéines de fusion ou de colorations histologiques,
des molécules d’intérêt au sein de tissus et cellules, fixés ou vivants. Ces systèmes permettent
également de visualiser et de quantifier de nombreux processus dynamiques en biologie tels que
la survie cellulaire, la migration cellulaire, les mesures des variations de potentiel membranaire ou
de concentration de calcium intracellulaire. Des expériences de trafic intracellulaire et d’interaction
protéine-protéine tels que le FRET, le FRAP ou la photo-manipulation (photo-activation, photoconversion) sont également réalisables grâce à des techniques de microscopie dynamique
avancée. La plate-forme propose également des études en biologie moléculaire grâce à la
technique de microdissection laser couplé à la PCR quantitative dans le but de quantifier les
expressions relatives de gènes dans des tissus ou des cellules.
Equipements
Microscopie à champ large :
Microscopes conventionnels Leica, Zeiss
Vidéo-microscope Leica DMIRE2-Metamorph
Scanner de lames Zeiss AXIOSCAN Z1 (Juin 2014)
Microscopie confocale :
Microscope confocal Zeiss LSM 710
Microscope confocal Zeiss LSM 7 Live
Microdissecteur Leica AS LMD
Poste d’analyse d’images
Photos
Partenaires
institutionnels
Réseaux
Financeurs
Nom de la plateforme
Plate-forme de Génomique Structurale et Fonctionnelle
Bâtiment Institut pour le Recherche sur le Cancer de Lille (IRCL)
Adresse / Téléphone Place de Verdun 59 045 LILLE
+ 33 (0)3 20 16 92 13
Laboratoire
Institut de Recherche sur le Cancer de Lille
d'accueil - locaux
2008
Date de création
oui
En activité
Responsable scientifique : Dr Martin Figeac
Responsable micro-arrays Affymetrix : Dr Meyling Cheok
Equipe :
Equipes
5 biologistes
6 bio-informaticiens
2 experts médicaux
Description
Activités
La plate-forme de génomique fonctionnelle et structurale est une structure dédiée à
l'analyse génomique. C’est un service commun de l'université Lille 2, IMPRT IFR-114,
ouvert à la communauté scientifique publique (Universités, CHRU, INSERM, CNRS) ou
privée, pour des projets à moyen/haut débit. La plate-forme est labellisée IBiSA
(Infrastructures en Biologie, Santé et Agronomie) au travers du réseau LIGAN (Lille
Integrated Genomics Advanced Network), et travaille en étroite collaboration avec les
équipes de recherche du Cancéropôle Nord-Ouest.
Ce service commun se compose de quatre plateaux complémentaires correspondant aux
différentes approches génomiques. Les analyses génomiques ont pour but de détecter et
de quantifier sur des biopuces ou par séquençage haut débit la présence de nombreuses
séquences d'ADN ou d'ARN et leurs variations, à l'échelle d'un génome ou dans une
région ciblée. Le premier plateau technologique utilise le séquençage haut débit d'Applied
Biosystems (SOLiD4) et de LifeTechnologies (PGM Ion-Torrent), dit de nouvelle
génération, pour proposer une approche génomique de séquençage avec une couverture
et une précision inégalée. Les deux plateaux suivant correspondent aux technologies de
micro-arrays les plus utilisées dans le monde : les technologies Agilent et Affymetrix.
Finalement, le quatrième plateau, transversal, permet l'analyse biostatistique et
bioinformatique des données générées.
Le personnel technique de la plate-forme a pour mission de s’assurer du bon
fonctionnement des équipements et d’organiser l’activité de la plate-forme sur les trois
premiers plateaux.
Plateau Séquençage Haut Débit (NGS) :
• RNA-seq (séquençage du transcriptome complet) : analyse qualitative (SNP, jonctions
exons-exons, fusions de gènes, nouveaux transcrits) et analyse quantitative (analyse de
l’expression génique).
• Target-seq (all exome et reséquençage ciblé) : analyse qualitative de régions d'ADN
génomique (SNP, indel, inversion) et analyse quantitative (nombre de copies, estimation
du pourcentage de clones porteurs de mutations au sein d’un même échantillon).
• ChIP-seq : étude de l'immunoprécipitation de la chromatine.
• Méthyl-seq : étude de la méthylation de l'ADN génomique.
Plateau micro-array Agilent :
• SNP6 : génotypage pangénomique de SNP, pertes d'hétérozygotie, de variation du
nombre
• Gene Expression Profiling : analyse quantitative du transcriptome, des miRNA...
• ChIP on chip : analyse fonctionnelle de promoteurs, du méthylome...
Plateau micro-array Affymetrix :
• SNP6 : génotypage pangénomique de SNP, pertes d'hétérozygotie, de variation du
nombre de copies chromosomiques.
• Oncoscan : Oncoscan : analyse du nombre de copies à haute résolution (expertise
particulière dans approximativement 900 gènes impliqués dans les cancers), perte
d'hétérozygotie (LOH) sur génôme entier, études cliniques (données de mutation
somatique en une analyse unique), à partir d'échantillons d'ADN dégradés, ou issus de
FFPE, ou en petites quantités.
• HTA : Transcriptome, 3’ et profil d'expression des isoformes de transcrits connus
produits par un gène.
Activités
Plateau bioinformatique :
Notre équipe est spécialisée dans le conseil pour la mise en place de projets de
génomiques et l’accompagnement de nos partenaires au cours de ces projets :
• Analyse des données de séquençage sur cluster de calcul de 80 processeurs.
• Développement à façon de méthodes d'analyse.
• Analyse des CNVs (Copy Number Variation) avec logiciels commerciaux (DNA
Analytics, Partek, GCOS, SVS GoldenHelix) et logiciels développés par la plate-forme
(WACA, clustering, classification supervisée).
• Analyse fonctionnelle sur logiciels commerciaux (Ingenuity Pathway Analysis,
GeneSpring).
• Analyses à façon (design expérimental, design custom de capture SureSelect pour
séquençage, design de primers, bases de données, publication des données sur GEO…).
Séquenceurs haut débit :
SOLID4 (Applied BioSystems)
PGM Ion Torrent et Proton (Life Technologies)
Equipements
Micro-arrays :
Technologie Agilent
Technologie Affymetrix
Photos
Partenaires
institutionnels
Réseaux
Financeurs
Nom de la plateforme
Plate-forme de Ressources Expérimentales
(animalerie conventionnelle et Haute Technologie)
Animalerie conventionnelle et Animalerie Haute Technologie
Faculté de Médecine, Pôle Recherche - 800 m2
Adresse / Téléphone Place de Verdun 59 045 LILLE
Animalerie conventionnelle: +33 (0)3 20 62 34 63
Animalerie Haute Technologie: +33 (0)3 20 62 20 61
Laboratoire
Université Lille 2
d'accueil - locaux
Date de création
2006
En activité
oui
Animalerie conventionnelle :
Dr Thomas Hubert, DVM, PhD, Maître de Conférence en Chirurgie Générale, Vétérinaire
et responsable de l'animalerie
1 assistant ingénieur
2 techniciens
Equipes
3 adjoints techniques
Animalerie Haute Technologie :
Delphine Taillieu, Ingénieur responsable de l'animalerie
2 Techniciens
5 adjoints techniques
Ces deux animalerie sont ouvertes à l’accueil d’utilisateurs externes et proposent des
espaces d’hébergement de différents types pour des animaux modèles classiquement
utilisés en expérimentation animale.
Des salles de manipulations et de petite chirurgie sont également mises à disposition
Description
dans les deux zones d’animalerie.
Dans tout les cas, tout le petit matériel de chirurgie, les consommables classiques
(seringues, aiguilles, plastiques, récipients, etc…) devront être apportés et donc pris en
charge par les utilisateurs.
Conditions conventionnelles (cages ouvertes, non ventilées) : Souris sauvages et
immunodéficientes, rats sauvages, lapins, mini-porcs (box individuels), brebis (box
individuels).
- Hébergement en cages ouvertes
Activités
Conditions Haute Technologie : SPF (Specific Pathogen Free = statut sanitaire contrôlé)
: Souris sauvages et immunodéficientes, souris transgéniques / A2 rats et souris
- Hébergement en portoirs ventilés
- Change des litières, ravitaillement eau et nourriture, contrôle clinique quotidien
- Élevage complet (hors génotypage)
La création de modèles transgéniques n'est pas disponible.
Pour la culture de cellules, des prélèvements peuvent être effectués en salle de
dissection mais les organes doivent être rapatriés dans les labos pour culture.
La mise en place de protocoles spécifiques d’étude reste à la charge des utilisateurs
selon les conditions suivantes (directive 2010/63 UE) :
- Avis favorable du Comité d'Éthique en Expérimentation Animale
- Livrets de compétences des personnes impliquées à jour
Equipements
Animalerie conventionnelle :
* 6 postes opératoires gros animaux comprenant : 1 module d'anesthésie gazeuse, 1
table d'opération, 1 table d'opération, 1 table d'instrumentation, 1 scialytique, 1 bistouri
électrique, 1 moniteur de paramètres patient (ECG, Spo2, etc..).
* 4 postes d'anesthésie et manipulation rongeurs.
* 2 colonnes de célioscopie / endoscopie.
* 2 échographes.
* 1 amplificateur de brillance (rayon X)
* 4 microscopes interventionnels dédiés à la microchirurgie dans le cadre du DU.
* 2 écrans pour visualisations et présentations de travail (film, image, etc..).
* 3 postes informatiques mobiles dont 1 équipé d'une option de capture d'images photos
ou vidéos.
* 2 centrifugeuses réfrigérées.
* 1 appareil de biochimie.
*1 appareil de numération sanguine toutes espèces.
* 1 autoclave d'instrumentation + une thermo soudeuse.
Animalerie Haute Technologie A2 :
* Balances
* Tapis chauffant
* Bain-marie
* Stéréotaxe
* Appareil d'anesthésie à l'isoflurane
Les instruments et les consommables (hors Equipements de Protection Individuels) sont
à la charge des utilisateurs.
Les matières absorbantes sont interdites.
Les ruptures de confinement sont interdites.
Partenaires
institutionnels
Réseaux
Financeurs
Nom de la plateforme
Plate-forme d'Imagerie du Vivant
Imagerie clinique :
Hôpital Roger Salengro
+33 (0)3 20 44 64 68
Imagerie pré-clinique :
Adresse / Téléphone
Université Lille 2
Faculté de Médecine, Pôle Recherche,sous-sol
Place de Verdun 59 045 LILLE
+ 33 (0)3 20 62 34 88
Laboratoire
CHRU de Lille - Hôpital Salengro
Université Lille 2
d'accueil - locaux
2008
Date de création
oui
En activité
Responsable scientifique :
Pr Xavier Leclerc
Equipe :
Equipes
9 techniciens, ingénieurs et attachés de recherche clinique
18 experts médicaux
Description
La plate-forme dispose de deux plateaux, l’un de recherche pré-clinique et le second de
recherche clinique qui ont ouvert en 2008 sur le campus hospitalo-universitaire de Lille. Le
plateau de recherche pré-clinique est localisé dans les locaux du Pôle Recherche de la Faculté
de Médecine, à proximité de l'animalerie (DHURE). Il offre principalement la possibilité
d'examens d'imagerie in vivo morphologiques (IRM, TDM) et fonctionnels (IRM, TEP) pour les
petits animaux (rats, souris) et d'IRM pour les animaux plus gros (moutons, porcs). Le plateau
de recherche clinique (pour les études humaines) est localisé sur le Campus hospitalouniversitaire à l’Hôpital Roger Salengro (IRM dédiée à la recherche) et à l’Hôpital Huriez (TEPTDM partagée pour l'activité clinique et l'activité recherche).
Activités
La plateforme a permis au site lillois de mener des recherches translationnelles associant des
projets précliniques et cliniques et de constituer ou participer à des cohortes nationales ou
internationales de grande envergure. Cette structuration clinique et technique nous a permis
notamment de devenir un acteur important dans des projets européens et d’avoir contribuer à
des succès au Programme Investissement Avenir (PIA) ou à des appels d’offres nationaux
(SIRIC OncoLille ; Labex Distalz) avec plus de 90 projets en 2013 se déclinant selon 4 axes
thématiques :
- Etude des principaux biomarqueurs en pathologie neurodégénérative (biologie, imagerie,
électrophysiologie) dans le cadre des cohortes cliniques et du projet européen Pharmacog.
- Etude du connectome dans le cadre du projet Energie dont l’objectif est de localiser
précisément la zone épileptogène et étudier sa diffusion chez les patients épileptiques
pharmacorésistants grâce à un enregistrement simultané EEG et IRMf.
- Caractérisation des tumeurs cérébrales avec des études précliniques et cliniques,
notamment sur le traitement photodynamique des gliomes et des cancers de la prostate et des
études cliniques sur le diagnostic précoce du cancer de la prostate par imagerie multimodalité.
- Etude des relations entre maladie vasculaire et Alzheimer avec des approches pré-cliniques
par les modèles animaux, cliniques par l'étude des grandes cohortes (Strokdem)
et pharmacologiques par l’étude de l’effet des drogues utilisées pour traiter les facteurs de
risques.
Equipements
La plate-forme comprend aujourd’hui 5 équipements :
- IRM 0.2 Tesla Hitachi à champ ouvert dédiée à l’imagerie des gros animaux (brebis, porc),
utilisée principalement pour les études sur l’inflammation du colon, l’anatomie du cerveau ou
pour la mise au point d’outils méthodologiques d'IRM interventionnelle (traitement
photodynamique par lumière laser).
- Micro-IRM Bruker 7 Tesla pour les études anatomiques fines (100 micron par pixel) mais
également fonctionnelles et métaboliques (tenseur de diffusion, spectroscopie, perfusion ASL
et perfusion T1) pour l’exploration des rongeurs dans le cadre d’études longitudinales sur
l’ischémie cérébrale, les microhémorragies, les gliomes et les cancers prostatiques traités
photodynamiquement par laser.
- Micro PET (Inveon, Siemens), couple avec un microCT pour les études in vivo ou ex vivo sur
petit animal (taille max 1000 g). Les études fonctionnelles in vivo sont essentiellement basées
sur le métabolisme cellulaire, grâce a' l'injection de l'analogue du glucose marqué au 18F.
Nous évaluons essentiellement l'efficacité thérapeutique ou toxique et la validation de modèles
pathologiques dans tout type d'organe dans differentes disciplines (neurologie, inflammation,
urologie, pneumologie, cardiologie, gastroenterologie, oncologie, pharmacologie,
developpement de nanoparticules).
- TEP-scan GE qui intègre dans le même statif un tube à RX à 16 barrettes et un PET à 24
rangées de détecteurs de cristaux LYSO permettant des acquisitions 3D, dynamiques ou
synchronisées avec le rythme respiratoire ainsi des acquisitions avec correction de
l’atténuation avec des études orientées pour la grande majorité sur la maladie d’Alzheimer et
la cancérologie.
- IRM 3T Philips dédiée recherche permettant des mesures précises (épaisseur corticale,
volume hippocampique) dans les maladies neuro dégénératives, d'évaluer la charge en fer des
noyaux gris centraux dans la maladie de Parkinson, de calculer le volume sanguin
cérébral dans la maladie d'Alzheimer et d'étudier les connexions neuronales par tenseur de
diffusion et par IRMf de repos dans l'épilepsie et la maladie d'Alzheimer.
Photos
Partenaires
institutionnels
Réseaux
Financeurs
Nom de la plateforme
Plate-forme d'Interactions Moléculaires et Binding
Université Lille 2
- Faculté de Médecine, Pôle Recherche
Place de Verdun 59 045 LILLE
Adresse / Téléphone
+ 33 (0)3 20 62 69 73
- Faculté de Pharmacie, Bd du Pr. Laguesse
+33 (0)3 20 96 49 04
Laboratoire
Université Lille 2
d'accueil - locaux
2006
Date de création
oui
En activité
Responsables scientifiques :
Dr Pierre-Marie Danzé
Dr Christophe Furman
Equipes
Equipe :
Dr Xavier Dezitter
Anne-Sophie Drucbert
Description
La plate-forme est une structure ouverte, dédiée à l’étude des interactions entre molécules
par des méthodes physiques.
Les études réalisées peuvent ainsi porter sur l'affinité ligand-récepteur, la mesure d’activité
enzymatique, l'étude de fonctionnalité et de toxicité.
Interaction moléculaires :
La technique principale est la résonance plasmonique de surface qui a été mise en place
sous forme de prestation depuis 2006. Cette méthode sensible, sans marquage, se
présente comme une chromatographie d’affinité avec détection en continu de l’interaction
ligand-analyte, ce qui permet d’établir soit des caractéristiques d’affinité entre molécules,
soit des aspects d’organisation entre molécules, soit une quantification moléculaire. La
nécessité d’optimiser les protocoles, l’importance des facteurs expérimentaux pouvant
interférer, la difficulté d’analyser et d’interpréter correctement les diagrammes obtenus
(sensorgrams) nous ont poussés à développer une activité d’expertise dans ce domaine.
Nos prestations pour cette activité comprennent toujours une assistance technique et
scientifique ou peuvent faire l’objet d’une prise en charge contractuelle.
Activités
Equipements
Partenaires
institutionnels
Financeurs
Binding :
Le but de la plateforme de binding est l’étude de l’affinité d’un candidat médicament pour sa
cible moléculaire, par l’utilisation de ligands radiomarqués. Ainsi pour chaque nouvelle
molécule, les constantes de fixation du ligand (médicament) pour son récepteur y sont
déterminées (Kd, Bmax, Ki). Notre expertise en biologie cellulaire complète la
caractérisation par des analyses fonctionnelles de la fixation ligand/récepteur. Elles
permettent de discriminer les propriétés agoniste, agoniste partiel, agoniste inverse ou
antagoniste du ligand testé et d’évaluer la réponse cellulaire induite par la fixation du ligand
sur son récepteur déterminée par divers tests biologiques (analyse de la transduction du
signal par les récepteurs couplés aux protéines G, de la régulation des gènes cibles, de la
toxicité cellulaire, de la prolifération cellulaire). La plateforme de binding permet donc de
tester à façon des ligands innovants ou des ligands pour lesquels l’identification d’une
nouvelle cible pharmacologique doit être validée.
Résonance plasmonique de surface: Biacore 3000
Thermophorèse (Septembre 2014)
QPCR
Nanodrop
Lecteur de plaque (absorbance, luminescence, fluorescence)
Salle radio-éléments
Comptage en scintillation liquide, solide et luminescence
Cell harvester
Salle de culture / Salle de bactériologie
Nom de la plateforme
Plate-forme d'explorations comportementale et fonctionnelle
Université Lille 2
Faculté de Médecine
Adresse / Téléphone
Place de Verdun 59 045 Lille
+33 (0) 3 20 44 54 49
Laboratoire
d'accueil - locaux
Université Lille 2
Date de création
En activité
2013
oui
Equipes
Responsable scientifique: Dr Charlotte Laloux ([email protected])
Description
La plate-forme d’explorations comportementale et fonctionnelle est un espace de 150m2 dédié à
l’analyse du comportement des rongeurs. Elle est soumise aux règlementations associées à
l’expérimentation animale. Cet espace comprend 2 zones indépendantes, une consacrée à l'étude
du rat et l’autre de la souris.
Activités
Les tests d’évaluation comportementale de la plate-forme permettent notamment de caractériser
des modèles rongeurs de neuropathologies sur le plan des capacités cognitives (l’attention, la
mémoire, les fonctions exécutives, enregistrement EEG…), des troubles moteurs majeurs et de la
motricité fine, ainsi que les traits d’anxiété/dépression.
Equipements
Photos
Partenaires
institutionnels
Financeurs
* Armoires ventilées pour la stabulation temporaire des animaux
* Logiciels de tracking vidéo et d’acquisition : ABET II Touch (Campden instruments), Ethovision
(Noldus), VideoTrack (View point), Actitrack (BIOSEB), Shut Avoid (BIOSEB)
* Tests comportementaux : Touchscreen (Campden Instruments), Neurologger (NewBehavior,
TSE systems), Barnes maze (Noldus), Radial maze (Noldus), Piscine de Morris (Viewpoint),
Actimétrie (BIOSEB), Rotarod (BIOSEB), Grip test (BIOSEB), Y-maze, Open-field et
reconnaissance d’objet, Labyrinthe en croix surélevé, pole test, prehensile traction test…