1. No category

latex, tillräckligt för 60 tester. De innehåller
även 0,098 % natriumazid och 0,05 %
ProClin 300® som konserveringsmedel.
Förvaras i 2 till 8 °C. Stabil fram till det
utgångsdatum som anges på etiketten.
Blanda lösningen precis före användning
så att latexkulorna finns i hela lösningen.
Blanda genom att försiktigt skaka flaskan
eller vända den upp och ner.
Key Code TSMX7733A
www.oxoid.com/ifu
Europe +800 135 79 135
CA 1 855 805 8539
US 1 855 2360 190
Positiv kontroll (DR0707G)
En droppflaska med 2.8 ml polyvalent
kontrollantigen består av extraherade
streptokockantigen för representativa
stammar av Lancefield-grupperna A, B, C,
D, F och G. Lösningen innehåller 0,098 %
natriumazid som konserveringsmedel.
Förvaras i 2 till 8 °C. Stabil fram till det
utgångsdatum som anges på etiketten.
ROW +31 20 794 7071
PathoDxtra
Kit för gruppering av
streptokocker
SV
DR0700M .....................60 Tester
1
AVSEDD ANVÄNDNING
PathoDxtra kit är ett latexagglutineringstest för gruppering av
streptokocker, vilket är en snabb metod för serologisk identifiering
av streptokocker i Lancefield-grupperna A, B, C, D, F och G från
primära odlingsplattor. Det material som ingår är avsett för in
vitro-diagnostik, som ett hjälpmedel för snabb gruppering av
streptokocker.
TM
2
3
PRINCIP FÖR TESTET
I PathoDxtra-proceduren reagerar och agglutinerar de
specifika antikropparna som finns på latexpartiklarna med
streptokockgruppens antigen som extraherats från bakteriens
cellvägg. Vid förekomst av motsvarande streptokockgrupps
antigen bildar de sensibiliserade partiklarna en klar och tydlig
lättavläst kornig agglutination, i kontrast till det likformiga mjölkiga
utseendet hos ett negativt test.
Den gruppspecifika antigenen extraheras med salpetersyra vid
rumstemperatur. Därefter neutraliseras reaktionsblandningen.
Extraherad antigen agglutineras med IgG-belagda latexpartiklar
under en minuts rotation av reaktionskortet.
Reagenserna är avsedda att ge en positiv agglutinering med
en till fyra kolonier av en 18 till 24 timmars odling för de flesta
ß-hemolytiska streptokockisolat. För mycket små kolonier av grupp
F och små kolonivarianter av andra streptokocker kan det krävas
10 eller fler kolonier.
Snabb test för gruppering av streptokocker har bäst korrelation
med referensmetoder om endast streptokocker som är
ß-hemolytiska på fårblodagar testas1,2,3,4.
4
6
6.1
6.2
6.3
6.4
6.5
6.6
Tillverkare
6.7
Positivt resultat
Negativt resultat
KITETS INNEHÅLL, PREPARATION FÖR ANVÄNDNING
OCH FÖRVARING
I PathoDxtra kit för gruppering av streptokocker finns reagens
60 test
för
Se även Försiktighetsåtgärder, sektion 6.
Utgångsdatum för kitet anges på förpackningens etikett.
Oöppnad, förvara vid 2 till 8 ° C. När satsen tas i bruk men endast
latexreagenserna och den positiva kontrollen måste förvaras
vid 2 till 8 ° C. De återstående komponenterna kan förvaras vid
rumstemperatur.
Bruksanvisning
Blandningsstickor (2 buntar)
Reaktionskort för engångsbruk (1 fp
DR0720G)
Procedurkort
Komponenterna i kitet är utbytbara mot komponenter med samma
referensnummer. Komponenterna kan köpas separat.
Grupperingslatex
Latex för streptokock A-gruppering
(DR0701G)
Latex för streptokock B-gruppering
(DR0702G)
Latex för streptokock C-gruppering
(DR0703G)
Latex för streptokock D-gruppering
(DR0704G)
Latex för streptokock F-gruppering
(DR0705G)
Latex för streptokock G-gruppering
(DR0706G)
Sex droppflaskor, som var och en är specifik
för en av grupperna A, B, C, D, F och G,
innehåller kanin-IgG-sensibiliserat blått
5
6
7
8
PRECAUTIONS
9
10
Enligt principerna för god laboratoriepraxis rekommenderar
vi bestämt att extrakt från alla steg av testning behandlas
som potentiellt smittspridande och hanteras med lämpliga
försiktighetsåtgärder.
I grupperingslatex ingår 0,05 % ProClin 300 ® som
enligt tillämpliga EEG-direktiv (Europeiska ekonomiska
gemenskapen) klassificeras som irriterande (Xi). Lämpliga
risk- (R) och skyddsfraser (S):
R25
S37
S45
6.10
6.11
Reagenserna får inte användas efter angivet utgångsdatum.
Får ej användas om det finns tecken på kontamination eller
i övrigt försämrat skick.
Berör inte kortens reaktionsområden.
Komponenterna i detta kit får inte lämnas i direkt solljus.
7
PROVTAGNING OCH TRANSPORT AV PROVER
5
6
7
FÖRSIKTIGHET: Vissa bakterieodlingar med yttre mukoidskikt kan
fånga in mikropartiklar, vilket leder till icke-specifik agglutinering.
Detta förekommer ofta med den direkta koloniproceduren. För
att minimera detta problem ska testning stoppas efter en första
positiv reaktion noteras.
Se Kitets innehåll, sektion 5.
ERFORDERLIGT MATERIAL SOM EJ MEDFÖLJER
Steriliseringsenhet för öglor
Inokuleringsögla, bomullspinne, uppsamlingsbehållare
Inkubatorer, alternativa omgivningssystem
Extra media
Kvalitetskontrollorganismer
Destillerat vatten
12 × 75 mm provrör
50 µl pipetter med engångsspetsar, kapillärpipetter eller
Pasteur-pipetter
Glödlampa (rekommenderas)
PROCEDUR
8.1
Alla komponenter (utom latexreagenser och kontroll) ska
uppnå rumstemperatur (15 till 30 °C) före användning.
Alternativet testning från buljongodling
1
Inokulera 0,5 ml buljong (se Försiktighet nedan) med
två eller fler kolonier (beroende på storlek) av det isolat
som ska grupperas.
Inkubera buljongen vid 35 till 37 °C tills den är tydligt
grumlig (normalt 4 timmar eller längre).
Centrifugera buljongen vid 1000 x g i 15 minuter.
Pipettera försiktigt bort buljongen från
bakteriepelleten.
Tillsätt 1 fritt hängande droppe av reagens 1 i
bakteriepelleten genom att hålla flaskan vertikalt och
klämma försiktigt. Lös upp bakteriepelleten.
Tillsätt 1 fritt hängande droppe av reagens 2 genom
att hålla flaskan vertikalt och klämma försiktigt. Blanda
försiktigt.
Tillsätt långsamt 5 fritt hängande droppar av reagens
3.
Tillsätt 8 droppar med destillerat vatten från en 5 ml
pipett och blanda försiktigt.
Testa 50 µl av extraktet enligt anvisningarna under
Testprocedur, steg 6 till 10, (Kolonier på fast media).
3
4
5
6
7
8
9
TESTPROCEDUR
ERFORDERLIGT MATERIAL SOM MEDFÖLJER
C
2
Prover ska tas och hanteras enligt rekommenderade riktlinjer 1.
8
Denna alternativa procedur kan beaktas när det finns
tillräckligt många kolonier för att uppfylla testkraven
(d.v.s. 4 kolonier per grupperingsreagens eller 20
kolonier för fullständig gruppering).
Plocka 4 isolerade kolonier med en engångssticka
eller med en inokuleringsögla. (Det kan krävas fler än
4 kolonier om kolonierna är mycket små eller mindre
än 18 timmar gamla.)
Gnid kolonierna noga och jämnt på PathoDxtra
reaktionskortet i mitten av den angivna cirkeln.
Upprepa steg 1 och 2 för varje grupperingsreagens
som ska användas.
Tillsätt 1 fritt hängande droppe av streptokock A-latex
i den första cirkeln genom att hålla flaskan vertikalt och
tillsätt sedan 1 fritt hängande droppe av streptokock
B-latex i den andra cirkeln genom att hålla flaskan
vertikalt och klämma försiktigt. Fortsätt på samma
sätt att tillsätta streptokock C-, D-, F- och G-latex i de
återstående fyra cirklarna.
Blanda latex och utstrukna kolonier noga med en
blandningssticka. Använd en ren ände för varje cirkel.
Håll reaktionskortet under lämplig belysning och
rotera försiktigt reaktionskortet fram och tillbaka.
En positiv agglutinerings-reaktion med en av
latexreagenserna sker normalt inom 10 sekunder. Sluta
rotera reaktionskortet så snart som tydligt märkbar
positiv reaktion noteras och anteckna resultatet.
Rotera inte reaktionskortet i mer än 60 sekunder.
Om resultatet inte går att fastställa entydigt ska
syraextraktionsprocedur användas.
4
ANALYTISKA FÖRSIKTIGHETSÅTGÄRDER
6.8
6.9
Alternativet direkt koloniprocedur
1
3
Giftigt vid förtäring.
Använd lämpliga skyddshandskar
Vid olycksfall eller om du inte mår bra,
uppsök genast läkare (visa etiketten om
så är möjligt)
Extraktionsreagens 2 och 3 har inte klassificerats som
farliga, men i dessa ingår en svag syra respektive ett milt
irriterande ämne. Därför ska direktkontakt undvikas genom
användning av personlig skyddsutrustning. Om materialet
kommer i kontakt med huden, slemhinnor eller ögon, tvätta
genast området med rikligt med vatten.
Natriumazid, med lägre koncentration än 0,1 %, har tillsatts
i vissa komponenter som bakteriedödande medel. För att
förhindra ansamling av explosiva metallazider i bly- och
kopparrör får reagenserna endast kasseras i avloppet om
de är utspädda och om de spolas ner med stora mängder
vatten.
Pipettera inte material med munnen. Använd
engångshandskar och ögonskydd vid hantering av prover
och när analysen utförs. Tvätta händerna noga efteråt.
Återanvändbar utrustning ska steriliseras med en
lämplig metod efter användning. Den metod som
rekommenderas är autoklavering i 15 minuter vid 121 °C.
Engångsprodukter ska autoklaveras eller brännas.
Spill av potentiellt smittspridande material ska genast
torkas upp med absorberande pappershanddukar
och det kontaminerade området ska rengöras med
bakteriedödande desinficeringsmedel eller 70 % alkohol.
Använd INTE natriumhypoklorit. Material som används
för att rengöra spill, inklusive handskar, ska kasseras som
smittfarligt avfall.
B
2
Kan ge allergi vid hudkontakt
Undvik kontakt med hud och ögon
I extraktionsreagens 1 ingår natriumnitrit som klassificerats
enligt tillämpliga EEG-direktiv (Europeiska ekonomiska
gemenskapen) som giftigt (T). Lämpliga risk- (R) och
skyddsfraser (S):
T
Lotnummer
5
Reagens 2 (DR0709B)
R43
S24/25
Se bruksanvisning
Rotera kortet i 10 till 60 sekunder
4
INFORMATION OM HÄLSA OCH SÄKERHET
Innehåller tillräckligt med material för <n>
tester
Använd före (utgångsdatum)
Märk ett av 12 x 75 mm provrör för varje prov.
Tillsätt 1 fritt hängande droppe av reagens 1 i
varje provrör genom att klämma flaskan försiktigt i
vertikalläge.
Plocka 1 till 4 isolerade ß-hemolytiska kolonier med
en engångssticka eller med en inokuleringsögla och
suspendera dem i reagens 1. (Om kolonierna är mycket
små ska tillräckligt många kolonier vara i suspension
i reagens 1, så att den blir grumlig.) Använd inte en
bomullspinne, eftersom den skulle absorbera för stor
vätskevolym. Gnugga stickan eller öglan mot botten
eller på sidan av provröret, blanda ordentligt. Stickan
eller öglan ska kasseras på föreskrivet sätt.
Tillsätt 1 fritt hängande droppe av reagens 2 i
varje provrör genom att klämma flaskan försiktigt i
vertikalläge. Blanda reagenserna genom att knacka
på provröret med ett finger i fem till tio sekunder.
(Inkubation av provrören är inte nödvändigt, men de
kan dock lämnas i upp till 60 minuter i rumstemperatur
(15 till 30 °C), om försiktighetsåtgärder vidtas mot
uttorkning. Längre inkubationstider har inte testats.)
Tillsätt 5 fritt hängande droppar av reagens 3 i varje
provrör genom att hålla flaskan vertikalt och klämma
försiktigt. Blanda reagenserna genom att knacka
på provröret med ett finger i fem till tio sekunder.
Om testning inte görs genast ska provröret förvaras
ordentligt tillslutet i 2 till 8 °C och testas inom
24 timmar.
Planera en rad med testcirklar på PathoDxtra
reaktionskort för varje prov eller kontroll som ska
testas.
Tillsätt 40-50 µl extrakt i var och en av sex testcirklar.
Blanda latexreagenserna genom att försiktigt skaka
eller vända flaskan upp och ner. Tillsätt 1 fritt
hängande droppe av streptokock A-latex i den första
cirkeln genom att hålla flaskan vertikalt och klämma
försiktigt. Tillsätt sedan 1 fritt hängande droppe av
streptokock B-latex i den andra cirkeln genom att
hålla flaskan vertikalt och klämma försiktigt. Fortsätt
på samma sätt att tillsätta streptokock C-, D-, F- och
G-latex i de återstående 4 cirklarna.
Blanda latex och extrakt med en blandningssticka.
Använd en ren ände för varje cirkel.
Håll reaktionskortet under lämplig belysning och rotera
försiktigt reaktionskortet fram och tillbaka. En positiv
agglutinerings-reaktion med en av latexreagenserna
sker normalt inom 30 sekunder. Sluta rotera
reaktionskortet så snart som tydligt märkbar positiv
reaktion noteras och anteckna resultatet. Rotera inte
reaktionskortet i mer än 60 sekunder.
Reagens 1 (DR0709A)
En flaska med 4.0 ml blåfärgad
natriumnitritlösning med 0,098 %
natriumazid som konserveringsmedel.
Förvaras upprätt och ordentligt tillsluten.
Stabil i rumstemperatur (2 till 30 °C) till på
etiketten angivet utgångsdatum.
Reagenserna är endast avsedda för in vitro-diagnostik.
Endast för användning av behörig personal.
Se databladet om (SDS) och produktmärkning för information om
potentiellt farliga komponenter.
Katalognummer
Temperaturbegränsning
(förvaringstemperatur)
Kolonier på fast media:
1
2
3
Reagens 3 (DR0709C)
Två flaskor med 10 ml färglös
neutraliseringslösning (Tris-buffertlösning)
med 0.098 % natriumazid som
konserveringsmedel. Förvaras upprätt och
ordentligt tillslutna. Stabila i (2 till 30 °C) till
på etiketten angivet utgångsdatum.
DEFINITIONER AV SYMBOLER
Medicinteknisk produkt för in vitrodiagnostik
A
En flaska med 4.0 ml mild syralösning
(ättiksyralösning) och en lila indikator.
Förvaras upprätt och ordentligt tillsluten.
Stabil i rumstemperatur (2 till 30 °C) till på
etiketten angivet utgångsdatum.
SAMMANFATTNING
Streptokockgruppens kolhydrater i streptokockgrupperna A,
B, C, F och G är komplexa antigener som vanligen består av
ramnosoligosackarider och olika sidokedjor, vilka främst består av
glukosamin, antingen acetylerat eller icke-acetylerat. Antigenen
för grupp D-streptokocker är lipoteikonsyra.
PathoDxtra-proceduren använder en latexagglutineringsmetod
tillsammans med ett extraktionssteg med salpetersyrlighet. IgG
kopplat till latex är högst specifikt för en viss antigen mot en
streptokockgrupp. Denna metod ger väsentliga fördelar jämfört
med andra procedurer för gruppering av streptokocker - den är
snabb, enkel och bekväm.
Om latexreagenser och kontroll förvaras i 2 till 8 °C är det
inte nödvändigt att vänta tills dessa reagenser uppnår
rumstemperatur. Använd pipetter med engångsspetsar,
kapillärpipetter eller Pasteur-pipetter för att överföra
extraktet.
FÖRSIKTIGHET: Streptococcus pneumoniae och grupp
D-streptokocker kan frisätta korsreaktiva antigener i buljongen
om buljongen inkuberas under längre tid (t.ex. nattetid).
FÖRSIKTIGHET: Buljongen ska testas med latex för gruppering
av streptokocker för att vara säker på att autoagglutinering inte
förekommer, innan odlingar tillsätts i buljongen. Vissa fabrikat
av Todd-Hewitt-buljong kan orsaka autoagglutinering med olika
kommersiella grupperingsreagenser4. Detta har även noterats med
infusionsbuljong för hjärna/hjärta.
FÖRSIKTIGHET: Grupp D-streptokocker korsreagerar ofta med
andra grupper vid användning av buljongmetoden och är därför
svåra att detektera med denna metod.
9
KVALITETSKONTROLL
Kvalitetskontrolltest ska göras vid leverans och vid nytt kit
lotnummer. Varje laboratorium ska följa sina egna statliga och
lokala krav.
Följande metod kan användas för att kontrollera funktionen hos
latexreagenser:
a)
a)
c)
10
Test för reaktivitet hos latexsuspensioner (positiv
kontrollmetod)
Till ett test: Tillsätt en droppe (40 µl) positiv kontrollantigen
på reaktionskortet och blanda med latexsuspensionen.
Blanda innehållet i cirkeln med en ny blandningssticka.
När kortet har roterats försiktigt i en minut ska tydlig
agglutinering förekomma på alla testlatex.
Test för specificitet hos agglutinering (negativ
kontrollmetod)
Vid fall av mycket svag agglutinering ska de positiva testerna
göras om parallellt mot en droppe extrakt som preparerats
(enligt beskrivningen i testproceduren på fasta media) med
en ej inokulerad blandningssticka eller inokuleringsögla.
Latexsuspensionen ska nu uppvisa markant agglutinering
och resultatet är en kontroll för direkt jämförelse av testet
som utförts med bakterieextrakt.
Utför hela testproceduren på stamodlingar av kända
grupper.
RESULTAT
TOLKNING
10.1
10.2
10.3
POSITIVT RESULT: Det är en positiv reaktion när det
finns synlig agglutinering av latexmikropartiklar med
uppklarning av bakgrunden, inom 60 sekunder. PathoDxtra
kit för gruppering av streptokocker är avsedd att ge en
snabb agglutineringsreaktion med extraktet av en till fyra
kolonier av en 18 till 24 timmars odling av streptokocker i
Lancefield-grupperna A, B, C, D och G (stor kolonivariant),
på 60 sekunder, för de flesta streptokockisolat. För mycket
små grupp F-kolonier och små kolonistammar från andra
grupper krävs många fler kolonier (kraftig strykning) för
att ge en positiv agglutineringsreaktion.
NEGATIVT RESULT: Likformigt blekt, blått utseende utan
agglutinering efter 60 sekunder.
EJ ENTYDIGT RESULTAT: Om agglutinering skulle
förekomma med fler än ett latexreagens kan detta problem
lösas på följande sätt:
1.
Svag agglutinering med flera latexreagenser och avsevärt
kraftigare agglutinering med en reagens. Tolkning:
De svaga reaktionerna beror i allmänhet på en ickespecifik reaktion (t.ex. Staph. aureus) och den kraftigare
reaktionen är specifik för den streptokockgrupp som
indikeras.11
BEGRÄNSNINGAR I UTFÖRANDET
11.1
Falska negativa resultat kan förekomma om ett otillräckligt
antal kolonier används för extraktionen.
11.2 Falska positiva resultat kan förekomma med vissa
streptokockstammar, när för kraftigt inokulat extraheras.
Mindre korsreaktiva antigendeterminanter som inte utgör
en del av gruppens kolhydrat går att känna igen när stora
mängder extraheras och testas, vilket leder till en falsk
positiv reaktion.
11.3 S t r e p t o c o c c u s p n e u m o n i a e h a r g e m e n s a m m a
antigen-determinanter med grupp C ß-hemolytiska
streptokocker 8,9,10 och kan därför reagera positivt
med latex för streptokock C-gruppering 11. Eventuell
korsreaktivitet hos ett brett spektrum av kliniska isolat av
S. pneumoniae kan inte förutsägas. Grupp C-streptokocker
är ß-hemolytiska, men Streptococcus pneumoniae är
α-hemolytiska. Om du fortfarande är osäker ska odlingen
testas för optochinkänslighet, för att differentiera.
11.4 L i s t e r i a m o n o c y t o g e n e s u p p v i s a r l i k n a n d e
antigenegenskaper med grupp B- och G-streptokocker12
och kan därför reagera positivt med latex för streptokock
B- och/eller G-gruppering. Om identiteten hos kolonierna
som testas är osäker kan ett katalastest utföras för att
differentiera mellan Listeria och streptokocker. Listeria är
katalaspositiva och streptokocker är katalasnegativa.
11.5 När testning med direkt blododling utförs måste
proceduren Alternativ testning från buljongodling följas.
Trots att det inte rekommenderas kan gruppering av
streptokocker med direkt blododling göras, om nödvändiga
försiktighetsåtgärder vidtas och med full kunskap om
potentiella problem som är förknippade med att utföra
ett sådant test. Många av dessa problem har beskrivits i
vetenskaplig litteratur13,14,15.
11.6 Cirka 25 % av Streptococcus viridans (sällan ß-hemolytisk)
har gruppantigen och ytterligare 1,4 % har fler än en
påvisbar gruppantigen16. En studie drog slutsatsen: “Dessa
fakta gjorde att serogruppering inte var ett användbart
hjälpmedel för att differentiera Streptococcus viridans”16.
Om du fortfarande är osäker, utför relevanta biokemiska
tester för att bidra till identifiering.
11.7 Om buljongtestning utförs måste du vara medveten
om att vissa fabrikat av Todd-Hewitt-buljong kan
orsaka autoagglutinering med olika kommersiella
grupperingsreagenser 4. Detta har även noterats med
infusionsbuljong för hjärna/hjärta. Buljongen ska testas
med latex för gruppering av streptokocker för att vara säker
på att autoagglutinering inte förekommer, innan odlingar
tillsätts i buljongen.
11.8 Förekomst av antigener som är gemensamma för
organismer från heterologa arter eller släkten har påvisats
i vissa streptokocker17,18,19 och därför kan risken inte
elimineras att korsreaktioner av denna typ kan förekomma
i system för gruppering av streptokocker. Grupp D-antigen
är gemensam för organismer i streptokockgrupperna Q, R
och S17,18.
11.9 Vissa stammar av Enterococcus faecium och Streptococcus
bovis är svåra att gruppera.
11.10 Bakterieodlingar med yttre mukoidskikt kan fånga
in mikropartiklar, vilket leder till icke-specifik
agglutinering. Detta förekommer ofta med den direkta
testningsproceduren. För att minimera detta problem ska
testning stoppas efter en första positiv reaktion noteras.
11.11 Eftersom serogruppering av ß-hemolytiska kolonier endast
är baserad på förekomst av gruppspecifika kolhydrater
kommer resultaten inte att differentiera de normala
grupp A-, C-, F- och G-streptokockerna från de mycket
små Streptococcus anginosus (milleri) som har A-, C-,
F- eller G-antigener. Morfologi på blodagarplattor och
serologisk reaktion är de enda kriterier som används för
karakterisering av S. anginosus vid Centres for Disease
Control20. Biokemisk differentiering kan t.ex. göras med
den metod som beskrivs av Lawrence et al21.
12
PERFORMANCE CHARACTERISTICS
The performance of the PathoDxtra Streptococcal Grouping Kit
was evaluated at a hospital laboratory in Paris, France. A total
of 419 isolates were tested, including 311 Lancefield grouped
streptococci, 79 non-groupable streptococci/enterococci and
29 non-streptococci. The results obtained were compared to a
commercially available nitrous acid extraction kit.
Känslighet och specificitet för kiten som undersöktes har beräknats
från prövningsdata, enligt följande:
PathoDxtra
Kit för gruppering
av streptokockert
Predicate
enhet
Medelvärde för
känslighet (%)
89.1
85.2
Medelvärde för
specificitet (%)
97.8
97.5
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
14
13REFERENSER
1
13
Murray, P.R., E.J. Baron, J.H. Jorgensen, M.A. Pfaller, and R.H.
Yolken., 2003.
Manual of Clinical Microbiology. 8th ed., Vol 1. ASM, Washington,
D.C.
15
Shlaes, D.M., et al., 1984.
Comparison of latex agglutination and immunofluorescence for
direct Lancefield grouping of streptococci from blood cultures.
J. Clin. Microbiol. 20:195-198.
Wellstood, S., 1982.
Evaluation of Phadebact and Streptex Kits for rapid grouping of
streptococci directly from blood cultures.
J. Clin. Microbiol. 15:226-230.
Wetkowski, M.A., et al., 1982.
Direct Testing of Blood Cultures for Detection of Streptococcal
Antigens
J. Clin. Microbiol. 16:86-91.
16
Facklam, R.R., 1977.
Physiological differentiation of viridans streptococci.
J. Clin. Microbiol. 5:184-201.
17
Chorpenning, F.W., Cooper, H.R., et al., 1975.
Cross reactions of Streptococcus mutans Due to Cell Wall Teichoic
Acid.
Infect. Immun., 12, 586.
18
Ellio, S.D., and Taj, J.Y., 1978.
The type-specific polysaccharides of Streptococcus suis.
J. Exp. Med., 148, 1699
Facklam, R.R., et al., 1979.
Evaluation of commercial latex agglutination reagents for grouping
streptococci.
J. Clin. Microbiol. 10:641-646.
19
Nowlan, S.S., and Deibel, R.H., 1967.
Group Q Streptococci. 1 Ecology, Serology, Physiology and
Relationship to Established Enterococci.
J Bact., 94, 291.
Slifkin, M., and G.R. Pouchet-Melvin, 1980.
Evaluation of three commercially available test products for
serogrouping beta-hemolytic streptococci.
J. Clin. Microbiol. 11:249-255.
20
Harvey, C.L., and McIllmurray, M.B., 1984.
Streptococci with dual antigen specificity for Lancefield groups D
and G.
Eur. J. Clin. Microbiol., 3, 526.
21
Evins, G.M., et al., 1983.
The development by the Centers for Disease Control of a
specification for streptococcal serogrouping kits and its application
to Streptex and to the Phadebact Streptococcus Test.
J. Biol. Standard. 11:333-339.
Jablon, J.M., et al., 1965.
ß-Hemolytic Streptococci with Group A and Type II Carbohydrate
Antigens.
J. Bacteriol. 89:529-534.
Facklam, R.R., 1984.
The major differences in the American and British Streptococcus
taxonomy schemes with special reference to Streptococcus milleri.
Eur. J. Clin. Microbiol. 2:91-93.
Lawrence, J., et al., 1985.
Incidence and characterization of beta-hemolytic Streptococcus
milleri and differentiation from S. pyogenes (group A), S. equisimilis
(group C), and large-colony group G streptococci.
J. Clin. Microbiol. 22:772-777
Varumärket ProClin 300® tillhör Rohm and Haas Corp. Alla övriga varumärken
tillhör Thermo Fisher Scientific eller dess dotterbolag.
Ottens, H., and K.C. Winkler, 1962.
Indifferent and Haemolytic Streptococci Possessing Group-Antigen
F.
J. Gen. Microbiol. 28:181-191
Jennings, H.L., et al., 1980.
Structure of the complex polysaccharide C-substance from
Streptococcus pneumoniae type1.
Biochem. 19:4712-4719.
Krause, R.M., and M. McCarty, 1962.
Studies on the Chemical Structure of the Streptococcal Cell Wall:
II The Composition of Group C Cell Walls and Chemical Basis for
Serologic Specificity of the Carbohydrate Moiety.
J. Exp. Med. 115:49-62
Poxton, I.R., et al., 1978.
The structure of C-polysaccharide from the walls of Streptococcus
pneumoniae.
Biochem. J. 175:1033-1042.
Lee, P., and B.L. Wetherall, 1987.
Cross-reaction between Streptococcus pneumoniae and group C
streptococcal latex reagent.
J. Clin. Microbiol. 25:152-153.
Hopfer, R.L., et al., 1985.
Enzyme release of antigen from Streptococcus faecalis and Listeria
monocytogenes cross-reactive with Lancefield group G typing
reagents.
J. Clin. Microbiol. 22:677-679.
Oxoid Ltd Wade Road Basingstoke Hants, RG24 8PW
Storbritannien
För teknisk assistans, var god kontakta lokal distributör.
Bruksanvisning X7733A-SV,
reviderad Oktober 2013
Tryckt i Storbritannien