CEDIA® Cocaine OFT Assay (EU)
Kun for in vitro-diagnostikk
(Brukes sammen med Oral-Eze® Oral Fluid Collection System
(oppsamlingssystem for oralvæske))
10014734 (sett med 3 x 17 ml)
10014740 (sett med 65 ml)
Beregnet bruk
Thermo Scientific CEDIA Cocaine OFT Assay (OFT-analyse for kokain) skal brukes til kvalitativ og
semikvantitativ påvisning av bensoylekgonin i human oralvæske med grenseverdi for fortynnet
konsentrasjon på 10 ng/ml. Prøven må bare samles inn med Oral-Eze® oppsamlingssystem
for oralvæske. Analysen kalibreres mot bensoylekgonin og utføres med Olympus
AU680-analysatoren. Denne enheten til in vitro-diagnostikk skal bare brukes i kliniske laboratorier.
CEDIA® OFT-analyse gir bare et foreløpig analytisk testresultat. Det må brukes en spesifikk,
alternativ metode for å få et bekreftet analyseresultat. Gasskromatografi/massespektrometri
(GC/MS) og væskekromatografi med dobbel massespektrometri (LC-MS/MS) er foretrukne
bekreftelsesmetoder.(1-3) Kliniske vurderinger og faglig skjønn må legges til grunn ved all
testing for ulovlige narkotiske stoffer, særlig når man benytter foreløpige positive resultater.
Sammendrag og forklaring av testen
Innsamlingen av oralvæske er mindre invasiv, og det kreves ingen form for spesialutstyr.
Oralvæske inneholder for det meste det opprinnelige stoffet, og er derfor en bedre indikator
på nylig stoffbruk.
Kokain og dets viktigste metabolitter, bensoylekgonin (BE) og ekgoninmetylester er
primæranalyttene som dukker opp i oralvæske etter adminstrering av kokain intravenøst eller
ved inhalasjon.(4) Kokain havner i spyttet gjennom passiv diffusjon, og konsentrasjonen er mye
høyere i spytt enn i plasma. Kokain kan påvises i oralvæske innen 2 timer etter kokaininntak,
mens metabolittene har lengre halveringstid og kan påvises i flere timer. Påvisningsnivåene for
kokain og metabolitten BE er avhengig av dose, og i tilfeller av kronisk misbruk kan de være til
stede i oralvæsken i 12–36 timer.(5)
CEDIA OFT-analyse for kokain bruker rekombinant DNA-teknologi til å produsere et unikt
homogent enzymimmunanalysesystem.(6) Analysen er basert på det bakterielle enzymet
-galaktosidase, som er genetisk fremstilt i to inaktive fragmenter. Disse fragmentene
gjenforbindes spontant og danner et fullt aktivt enzym som i analyseformatet splitter et substrat
og genererer en fargeendring som kan måles spektrofotometrisk.
I analysen konkurrerer analytten i prøven med analytten konjugert i ett inaktivt fragment
(enzymdonor) av -galaktosidase, om antistoffbindingssteder. Hvis det finnes analytt i prøven,
bindes den til antistoffet slik at det inaktive enzymfragmentet kan danne aktive enzymer. Hvis det
ikke finnes analytt i prøven, bindes antistoffet til analytten konjugert på det inaktive fragmentet.
Dette hemmer gjendannelse av inaktive -galaktosidasefragmenter, og det dannes ikke noe
aktivt enzym. Mengden aktivt enzym som dannes, og resulterende absorbansendringer, er
direkte proporsjonal med analyttmengden i prøven.
Reagenser
1 EA-rekonstitusjonsbuffer
Inneholder buffersalter, 0,4 mg/l polyklonalt anti-bensoylekgonin-antistoff fra kanin,
stabilisator og konserveringsmiddel.
1aEA-reagens
Inneholder 0,171 g/l enzymakseptor (mikrobisk), buffersalter og konserveringsmiddel.
2 ED-rekonstitusjonsbuffer
Inneholder salter, stabilisatorer og konserveringsmiddel.
2aED-reagens
Inneholder 0,3 mg/l -enzymdonor (mikrobisk) konjugert til bensoylekgoninderivat, 1,67 g/l klorofenolrødt--D-galaktopyranosid, stabilisatorer, detergent og
konserveringsmiddel.
Unngå å puste inn støv/tåke/damp/sprut. Tilsølte arbeidsklær må ikke fjernes fra arbeidsplassen.
Benytt vernehansker/vernebriller/ansiktsskjerm. Ved utilstrekkelig ventilasjon skal
åndedrettsvern benyttes. VED HUDKONTAKT: Vask med mye såpe og vann. VED INNÅNDING:
Hvis det blir tungt å puste, skal offeret bæres ut i frisk luft og legges i en hvilestilling som gjør det
komfortabelt å puste. Ved hudirritasjon eller utslett: Søk legehjelp. Ved symptomer i luftveiene:
Kontakt et GIFTINFORMASJONSSENTER eller lege. Vask kontaminerte klær før gjenbruk.
Innhold/beholder skal avhendes i henhold til lokale/regionale/nasjonale/internasjonale
bestemmelser.
Denne testen er kun for in vitro-diagnostikk. Reagensene er skadelige hvis de svelges. Ikke bruk
reagenser etter utløpsdatoen.
Klargjøring og oppbevaring av reagens
Se avsnittet under for preparasjon av løsningene. Ta settet ut av kjøleskapet (2–8 °C) umiddelbart
før løsningene skal klargjøres.
Hvis du søler ved et uhell, må du gjøre rent og kaste materiale i samsvar med laboratoriets
standardprosedyrer og lokale og nasjonale bestemmelser.
Hvis emballasjen er skadet ved mottak, må du kontakte representanten for teknisk støtte
(se baksiden av dette pakningsvedlegget).
Klargjør løsningene i følgende rekkefølge for å minimere mulig kontaminasjon.
R2 enzymdonorløsning
Koble flaske 2a (ED-reagens) til flaske 2 (ED-rekonstitusjonsbuffer) med en av de vedlagte
adapterne. Bland ved å snu forsiktig på flasken, slik at alt lyofilisert materiale fra flaske 2a
overføres til flaske 2. Pass på at det ikke skummer. Koble flaske 2a og adapteren fra flaske 2 og
kast dem. Sett hetten på flaske 2 og la den stå ca. 5 minutter ved romtemperatur (21–25 °C). Bland
på nytt. Noter rekonstitueringsdatoen på flaskeetiketten. Sett flasken direkte ireagensrommet
i analysatoren eller i kjøleskap (2–8 °C) og la den stå 30 minutter før bruk.
R1 enzymakseptorløsning
Koble flaske 1a (EA-reagens) til flaske 1 (EA-rekonstitusjonsbuffer) med en av de vedlagte
adapterne. Bland ved å snu forsiktig på flasken, slik at alt lyofilisert materiale fra flaske 1a
overføres til flaske 1. Pass på at det ikke skummer. Koble flaske 1a og adapteren fra flaske 1 og
kast dem. Sett hetten på flaske 1 og la den stå ca. 5 minutter ved romtemperatur (21–25 °C). Bland
på nytt. Noter rekonstitueringsdatoen på flaskeetiketten. Sett flasken direkte i reagensrommet
i analysatoren eller i kjøleskap (2–8 °C) og la den stå 30 minutter før bruk.
MERKNAD 1: Komponentene i dette settet skal brukes som en integrert enhet. Ikke bland
komponenter fra ulike partier.
MERKNAD 2: Unngå krysskontaminering av reagenser ved å bruke riktig reagenshette på
riktig reagensflaske. R2-løsningen (enzymdonoren) skal være guloransje i fargen. Rød eller
rødlilla farge tyder på at reagensen er forurenset og må kasseres.
MERKNAD 3: R1- og R2-løsningen må holde samme temperatur som reagensrommet
i analysatoren før analysen utføres. Se det analysatorspesifikke bruksarket for ytterligere
informasjon.
Ytterligere materialer som er nødvendige (men som ikke følger med)
Reagensene skal oppbevares ved 2–8 °C. MÅ IKKE FRYSES. Se utløpsdatoen på esken eller
flaskeetikettene med hensyn til stabiliteten til de uåpnede komponentene.
Beskrivelse av settet
10016864CEDIA Multi-Drug OFT Negative Calibrator (negativ OFT-kalibrator for flere
narkotiske stoffer)
10016865 CEDIA Multi-Drug Calibrator 1 (kalibrator for flere narkotiske stoffer 1)
10016866 CEDIA Multi-Drug Calibrator 2 (kalibrator for flere narkotiske stoffer 2)
10016867 CEDIA Multi-Drug Calibrator 3 (kalibrator for flere narkotiske stoffer 3)
10016868 CEDIA Multi-Drug Calibrator 4 (kalibrator for flere narkotiske stoffer 4)
10016869 CEDIA Multi-Drug Control Set (kontrollsett for flere narkotiske stoffer)
R1-løsningen: 60 dager nedkjølt i analysator eller ved 2–8 °C.
R2-løsningen: 60 dager nedkjølt i analysator eller ved 2–8 °C.
96100-050
96100-500
96105-050
96105-500
Oral-Eze Collection Device (innsamlingsenhet) (50 pr. eske)
Oral-Eze Collection Device (innsamlingsenhet) (500 pr. eske)
Oral-Eze Sample Extractor (prøveekstraktor) (50 pr. eske)
Oral-Eze Sample Extractor (prøveekstraktor) (500 pr. eske)
Forholdsregler og advarsler
FARE: Pulverreagens inneholder ≤ 56 % w/w bovint serumalbumin (BSA), ≤ 2 % w/w
natriumazid. Væskereagens inneholder ≤ 1,0 % bovint serum, ≤ 0,3 % natriumazid og ≤ 0,1 %
legemiddelspesifikt antistoff (kanin).
H317 – Kan utløse en allergisk hudreaksjon.
H334 – Kan gi allergi eller astmasymptomer eller pustevansker ved innånding.
EUH032 – Kontakt med syrer frigjør meget giftig gass.
Innsamling og behandling av prøver
Oralvæskeprøver er egnet for bruk i CEDIA Cocaine OFT Assay (OFT-analyse for kokain).
Samle inn oralvæskeprøver ved hjelp av Oral-Eze Oral Fluid Collection System (system til
oralvæskeinnsamling). Det må sørges for å ivareta oralvæskeprøvens kjemiske integritet fra
innsamling til analyse ved å sette hette på prøveglassene, oppbevare prøvene ved 2–8 °C eller
ved romtemperatur (21–25 °C) og teste innen 21 dager etter innsamling.
Oralvæskeprøvene skal behandles som om de er potensielt smittefarlige.
Prøver med pH 5–9 er egnet for testing med denne analysen.
Fremgangsmåte for behandling av Oral-Eze-prøver
1. Merk prøveglasset med riktig identifikasjon.
2.Kontroller prøvetakingsdatoen på prøveglasset for å sikre at det ikke er gått mer enn
21 dager siden prøven ble tatt.
3. Åpne hetten og trykk på puten for å presse ut prøven.
4. Sett hetten på prøveglasset igjen, og prøven er klar til testing.
5. Sørg for at oralvæskeprøvene holder en temperatur på 4–37 °C under forsendelse.
6. Prøvene kan oppbevares ved romtemperatur (21–25 °C) i 21 dager. De bør lagres ved 2–8 °C.
Fremgangsmåte for analyse
Forskjellige vanlige, reseptfrie legemidler og strukturelt ikke-relaterte forbindelser ble testet
for kryssreaktivitet i analysen. De kryssreaktive løsningene ble preparert ved å tilsette
forbindelsen til negativ oralvæske ved de konsentrasjonene som er oppgitt i tabellen nedenfor.
Alle forbindelsene testet negativt og viste ingen kryssreaktivitet.
Oral-Eze-enheten til oralvæskeinnsamling inneholder en konserverende buffer som fortynner
den ublandede oralvæskeprøven. Kalibrator- og kontrollnivåer er satt til fortynnede nivåer.
MERK: Ved korrelasjon av Oral-Eze-resultatet fra analysen eller det assosierte LC-MS/MSbekreftelsesresultatet med en verdi for ublandet oralvæske, skal resultatet fra Oral-Eze-prøven
multipliseres med en faktor 3.
1. Pipetter de behandlede oralvæskeprøvene og kontrollene til merkede prøveglass og plasser
glassene i prøveringen på Olympus AU680-analysatoren.
2. Last inn reagenser (reagens 1 og reagens 2) i reagensrommet i analysatoren.
3. Pipetter kalibratorer til merkede glass og last glassene inn i prøveringen på analysatoren.
4.Programmer kjøringsoppsettet med 570 nm som primær bølgelengde og 660 nm som
sekundær bølgelengde. Se parameterarket for detaljerte instruksjoner om hvordan du
programmerer analysatoren.
Kvalitetskontroll og kalibrering
I henhold til god laboratoriepraksis skal kontroller testes hver dag det testes pasientprøver
og hver gang det utføres kalibrering. Kalibrer testene på nytt hvis det skiftes reagenser eller
hvis kontrollresultatene ligger utenfor etablerte grenseverdier. Påse at kontrollresultatene er
innenfor det etablerte området, som fastsatt av laboratoriets prosedyrer og retningslinjer. Hvis
resultatene faller utenfor de etablerte områdene, er analyseresultatene ugyldige. Alle påkrevde
kvalitetskontroller skal utføres i samsvar med lokale og sentrale forskrifter og vedtak. Hvert
laboratorium bør etablere sine egne kalibrerings- og kontrollrutiner.
Forbindelser
Testet konsentrasjon
(ng/ml)
Kokain
OFT-analyse
Negativ/positiv
Acetaminofen
600.000
Negativ
Acetylsalisylsyre
600.000
Negativ
Alprazolam
10.000
Negativ
Amobarbital
10.000
Negativ
Amoxicillin
80.000
Negativ
Amfetamin
80.000
Negativ
Ampicillin
10.000
Negativ
Atropin
10.000
Negativ
Fenetylamin
10.000
Negativ
Bupropion
10.000
Negativ
Kvalitative resultater
Grenseverdikalibratoren (kalibrator 2) brukes som referanse for å skjelne ”positive” fra
”negative” prøver. Prøver som gir en responsverdi som er lik eller større enn responsverdien
for grenseverdikalibratoren, anses som positive. Prøver som gir en responsverdi på mindre enn
responsverdien fra grenseverdikalibratoren, anses som negative. Se analysatorens spesifikke
applikasjonsark for ytterligere informasjon.
Butabarbital
10.000
Negativ
Butalbital
10.000
Negativ
Koffein
20.000
Negativ
Captopril
600.000
Negativ
Semi-kvantitative resultater
Det kjøres en standardkurve ved hjelp av alle kalibratorene for å estimere relative
konsentrasjoner av stoffet i prøvene. Se analysatorens spesifikke applikasjonsark for detaljert
informasjon.
Klordiazepoksid
80.000
Negativ
Klorpromazin
10.000
Negativ
Cimetidin
200.000
Negativ
Klonazepam
10.000
Negativ
Klorazepat
10.000
Negativ
Kodein
40.000
Negativ
Resultater og forventede verdier
Begrensninger
Et positivt resultat fra denne analysen angir bare forekomst av bensoylekgonin, og samsvarer
ikke nødvendigvis med graden av fysiologiske og psykologiske virkninger.
Det kan hende at andre stoffer og/eller faktorer (f.eks. tekniske eller prosedyremessige) enn
dem som er undersøkt i spesifisitetsstudien, kan påvirke testen og forårsake feilaktige resultater.
Spesifikke ytelsesegenskaper
Typiske ytelsesresultater oppnådd på Olympus AU680-analysatoren vises nedenfor. Resultatene
som oppnås i ditt laboratorium, kan avvike fra disse dataene.
Presisjon
Prøvene som inneholdt varierende mengder av bensoylekgonin ble testet i kvalitativ og semikvantitativ modus ved bruk av CLSI (EP05-A2)-presisjonsprotokoll. Prøvene ble randomisert og
testet med seks replikater to ganger daglig i fem dager. Totalt N = 60. Resultatene er oppsummert
i tabellen nedenfor.
Kvalitativ analyse:
Prøver
Resultatgjennomsnitt
(mA/min)
Innenfor kjøring
Totalt kjøring
SD
% CV
SD
% CV
Kotinin
10.000
Negativ
Cyclizin
10.000
Negativ
Dextrometorfan
10.000
Negativ
Diacetylmorfin
10.000
Negativ
Diazepam
40.000
Negativ
Digoksin
40.000
Negativ
Difenhydramin
10.000
Negativ
Enalapril
40.000
Negativ
Fluoksetin
200.000
Negativ
Gentisinsyre
10.000
Negativ
Kontroll, lav
490
3,5
0,7
7,6
1,5
Hydrokodon
10.000
Negativ
Grenseverdikalibrator
536
3,7
0,7
8,9
1,7
Hydromorfon
10.000
Negativ
Kontroll, høy
567
3,4
0,6
8,7
1,5
Ibuprofen
200.000
Negativ
Imipramin
8.000
Negativ
l-efedrin
10.000
Negativ
% CV
Tyroksin
200.000
Negativ
Lidokain
10.000
Negativ
Semi-kvantitativ analyse:
Prøver
Innenfor kjøring
Resultatgjennomsnitt
(ng/ml)
SD
% CV
Totalt kjøring
SD
Kontroll, lav
5,5
0,3
6,2
0,5
9,4
Grenseverdikalibrator
11,8
0,5
4,1
1,1
9,0
Loperamid
10.000
Negativ
Kontroll, høy
18,1
1,1
5,9
1,2
6,7
Medazepam
10.000
Negativ
Petidin
10.000
Negativ
Spesifisitet og kryssreaktivitet
Metabolitter av kokain ble testet for kryssreaktivitet i analysen. Den potensielt kryssreaktive
forbindelsen ble tilsatt negativ oralvæske ved de oppgitte konsentrasjonene og testet i kvalitativ
og semi-kvantitativ modus. Konsentrasjonene oppgitt nedenfor produserte deretter et resultat
som var tilnærmet likt grenseverdikalibratoren.
Testet konsentrasjon
(ng/ml)
Kokain
OFT-analyse
Negativ/positiv
Kokaetylen
17
Positiv
Kokain
17
Positiv
Ekgonin
1.900
Positiv
Ekgoninmetylester
20.000
Positiv
Forbindelser
2
Metadon
80.000
Negativ
Metamfetamin
80.000
Negativ
Metoprolol
10.000
Negativ
Morfin
20.000
Negativ
Naproksen
10.000
Negativ
Nikotinamid
10.000
Negativ
Nikotin
10.000
Negativ
Nifedipin
500.000
Negativ
Endogene/eksogene stoffer og pH-interferens
(Forts.)
Forbindelser
Testet konsentrasjon
(ng/ml)
Kokain
OFT-analyse
negativ/positiv
Norklordiazepoksid
10.000
Negativ
Nordiazepam
10.000
Negativ
Penicillin
10.000
Negativ
Den potensielle interferensen fra flere endogene og eksogene stoffer og pH-verdi med
påvisningsnøyaktigheten fra prøvene som inneholdt bensoylekgonin ved lav og høy
kontrollkonsentrasjon, ble testet i analysen. De interfererende stoffene ble tilsatt negativ
oralvæske ved konsentrasjonene som er oppgitt i tabellen nedenfor. Prøvene ble testet
i både kvalitativ og semi-kvantitativ modus. Det ble ikke observert noen interferens med de
interfererende stoffene og pH-prøvene ved lave og høye kontrollkonsentrasjoner.
Stoffer
Testet
konsentrasjon
(ng/ml)
Kontroll, lav
OFT-analyse for kokain
Kontroll, høy
Pentobarbital
10.000
Negativ
Fensyklidin
5.000
Negativ
Kontroll, lav
5
Negativ
I/T
15
I/T
Positiv
Fenobarbital
40.000
Negativ
Kontroll, høy
Fenylefrin
10.000
Negativ
Kotinin
0,01 mg/ml
Negativ
Positiv
Fenylpropanolamin
10.000
Negativ
Prokainamid
10.000
Negativ
Prokain
10.000
Negativ
Nikotin
0,005 mg/ml
Negativ
Positiv
Hemoglobin
0,05 mg/ml
Negativ
Positiv
Humant
serumalbumin
8,0 mg/ml
Negativ
Positiv
Propoksifen
40.000
Negativ
Natriumklorid
8,0 mg/ml
Negativ
Positiv
Pseudoefedrin
10.000
Negativ
Kolesterol
15 mg/ml
Negativ
Positiv
Kinidin
10.000
Negativ
Acetaminofen
0,1 mg/ml
Negativ
Positiv
Ranitidin
200.000
Negativ
Acetylsalisylsyre
0,1 mg/ml
Negativ
Positiv
Salbutamol
10.000
Negativ
Koffein
0,1 mg/ml
Negativ
Positiv
Salisylatsyre
100.000
Negativ
Ibuprofen
0,1 mg/ml
Negativ
Positiv
Secobarbital
80.000
Negativ
Kaffe
2 % v/v
Negativ
Positiv
Temazepam
10.000
Negativ
Melk
1 % v/v
Negativ
Positiv
∆ -THC
10.000
Negativ
Appelsinjus
2 % v/v
Negativ
Positiv
11-nor-Δ9-THC-COOH
5.000
Negativ
Tranebærjus
2 % v/v
Negativ
Positiv
Teofyllin
10.000
Negativ
Brus (Cola)
2 % v/v
Negativ
Positiv
Tolmetin
10.000
Negativ
Tannpasta
2 % v/v
Negativ
Positiv
Verapamil
200.000
Negativ
Munnskyllevann
2 % v/v
Negativ
Positiv
Negativ
Te
2 % v/v
Negativ
Positiv
Gebisslim
2 % v/v
Negativ
Positiv
pH
5–9
Negativ
Positiv
9
Zomepirac
10.000
Metodesammenligning
42 oralvæskeprøver fra rehabiliteringsklinikk ble innsamlet ved hjelp av Oral-Eze Oral Fluid
Collection Device. Oralvæskeprøvene ble testet med CEDIA Cocaine OFT Assay (OFT-analyse
for kokain) og med LC-MS/MS-metoden.
Kvalitativ analyse: Det totale samsvaret mellom CEDIA OFT-analyse for kokain og LC-MS/
MS med en grenseverdi på 10 ng/ml er 95,2 %. Sammenligning av prøveresultater fra CEDIA
OFT-analyse for kokain med LC-MS/MS viste 100,0 % sensitivitet og 90,9 % spesifisitet.
Kvalitativ
LC-MS/MS (ng/ml)
CEDIA
+
-
+
20
2*
-
0
20
*Diskordante prøver var negative ifølge LC-MS/MS.
Semi-kvantitativ analyse: Det totale samsvaret mellom CEDIA OFT-analyse for kokain og
LC-MS/MS med en grenseverdi på 10 ng/ml er 95,2 %. Sammenligning av prøveresultater fra
CEDIA OFT-analyse for kokain med LC-MS/MS viste 100,0 % sensitivitet og 90,9 % spesifisitet.
Semi-kvantitativ
LC-MS/MS (ng/ml)
CEDIA
+
-
+
20
2*
-
0
20
*Diskordante prøver var negative ifølge LC-MS/MS.
3
Referanser
1. Cone, E. J., et al. (2002). Oral Fluid Testing for Drugs of Abuse: Positive Prevalence
Rates by Intercept (TM) Immunoassay Screening and GC-MS-MS Confirmation
and Suggested Cutoff Concentrations. Journal of Analytical Toxicology, 26, 541-547.
2. Maurer, H. H. (2005). Advances in Analytical Toxicology: The Current Role of Liquid
Chromatography-Mass Spectrometry in Drug Quantification in Blood and Oral Fluid. Analytical and Bioanalytical Chemistry, 381, 110-118.
3. Lambert, W. E., et al. (2002). Simultaneous, quantitative determination of opiates, amphetamine, cocaine and Benzoylecgonine in oral fluid by liquid chromatography quadrupole-time -of- flight mass spectrometry. Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci., 779, 321-30.
4. Cone, E. J., Darwin, W. D., & Oyler, J. M. (1997). Cocaine disposition in saliva following
intravenous, intranasal and smoking administration. Journal of Analytical Toxicology,
21, 465-475
5. Cone, E. J., & Weddington, W. W. (1989). Prolonged occurrence of cocaine in human
saliva and urine after chronic use. Journal of Analytical Toxicology, 13, 65-72.
6. Henderson, D. R., et al. (1986). CEDIA, A New homogeneous Immunoassay System
Clin. Chem., 32, 1637-1641.
Microgenics Corporation
46500 Kato Road
Fremont, CA 94538 USA
Kundestøtte
og teknisk støtte for USA:
1-800-232-3342
B·R·A·H·M·S GmbH
Neuendorfstrasse 25
16761 Hennigsdorf, Germany
Oppdateringer knyttet til pakningsvedlegg finner du på:
www.thermoscientific.com/diagnostics
Andre land:
Kontakt din Thermo Fisher Scientific-representant.
AU680® er et varemerke for Beckman, Coulter Inc. og dets datterselskaper.
CEDIA® er et registrert varemerke for Roche Diagnostics.
10018131INS-2-NO
2016 03
4