MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición : 05 Fecha: 05. MAY. 2014 Página 1 de 77 Vigencia : 2014 -2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS CONTENIDO: 1. 2. 3. 4. 5. 6. Generalidades...............................................................................................................................2 Alcance .........................................................................................................................................2 Asignación de responsabilidades ..................................................................................................3 Elaboración de la orden o solicitud de examen y rotulación de las muestra: .................................3 Condiciones del paciente al momento de tomar la muestra ..........................................................4 Traslado de las muestras ..............................................................................................................5 6.1 Desde los servicios Clínicos hacia el Laboratorio. .................................................................5 6.2 Desde los Consultorios y consultorio de Especialidades hacia el Laboratorio .......................5 6.3 Hacia los Laboratorios de derivación .....................................................................................6 7. Conservación de las muestras ......................................................................................................6 8. Recepción y rechazo de las muestras ...........................................................................................7 8.1 Criterios de rechazo de muestras ..........................................................................................8 9. Descripción de la toma de muestras .............................................................................................8 9.1 Unidad Hematología ..............................................................................................................9 9.2 Unidad Bioquímica ..............................................................................................................10 9.3 Unidad TBC.........................................................................................................................13 9.4 Unidad Parasitología ...........................................................................................................13 9.5 Unidad Microbiología ...........................................................................................................14 10. Registros .................................................................................................................................30 11. Indicadores de medición definidos en su aplicación ................................................................31 12. Referencias bibliográficas .......................................................................................................35 13. Responsable de calidad ..........................................................................................................35 14. Distribución .............................................................................................................................35 15. Anexos ....................................................................................................................................35 Elaborado por: TM. Caterina Barra Tello Encargada Calidad Fecha: 05 MAYO 2014 Revisado por: EU. Julia Hernández Enfermera IAAS Fecha:06 MAYO 2014 Revisado por: BQ. Alfredo Bravo S. Encargado OFICALIDAD Fecha:12 MAYO 2014 Aprobado por: TM. Paola Araya F. Jefe Laboratorio Fecha: 19 MAYO 2014 MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 2 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 1. Generalidades: El trabajo en el laboratorio clínico se basa fundamentalmente en el análisis de muestras de pacientes y su objetivo es apoyar eficazmente el diagnóstico y tratamiento clínico, proporcionando evidencia efectiva de condiciones patológicas, monitoreo de terapias, evolución clínica, pronóstico etc. Esta labor se concreta mediante la entrega en un “resultado de examen” que proporciona la información investigada a partir de una muestra clínica. Sin embargo, para que el resultado de una muestra en estudio posea utilidad clínica es fundamental que todas las etapas involucradas en este proceso (fases pre-analítica, analítica y post-analítica) se ejecuten en forma óptima para asegurar con ello la calidad de la muestra, de los procesos y de los resultados. El garantizar que el proceso que incluye desde la solicitud del examen hasta la emisión del informe sea adecuado, requiere del compromiso permanente del equipo de salud, en el entendido de que las decisiones derivadas de la información emitida por el laboratorio “el resultado”, deben asegurar la calidad y seguridad en la atención de nuestros pacientes y reflejar su real estado fisiológico. El presente documento describe los aspectos más relevantes de la etapa pre-analítica incluyendo: 1.- La elaboración de la orden o solicitud de exámenes y rotulación de las muestras. 2.- Las condiciones del paciente al momento de tomar la muestra 3.- Traslado de las muestras. 4.- Conservación de las muestras 5.- Recepción y rechazo de las muestras 6.- Descripción de la Toma de Muestras La utilización de la información descrita en este manual nos permitirá asegurar la trazabilidad en los procesos y estandarizar las técnicas de toma de muestra, así como también, incorporar y desarrollar mejoras continuas en la calidad de los procesos del laboratorio clínico del Hospital de Los Andes. 2. Alcance: El presente manual y todas las disposiciones que contiene son de alcance, aplicación y cumplimiento de todo el personal que trabaja en el área clínica del Hospital San Juan de Dios de Los Andes y que le corresponde tomar las distintas muestras biológicas para la realización de los exámenes. También es extensiva a las salas de toma de muestra del laboratorio y a los consultorios y postas de la red asistencial y que derivan exámenes al laboratorio del Hospital de Los Andes. Sin excepción se debe aplicar en todos aquellos procedimientos y situaciones relacionadas con la toma de muestras biológicas. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 3 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 3. Asignación de responsabilidades: - Los Tecnólogos Médicos encargados de las respectivas secciones del laboratorio son responsables del material para la toma de muestra y de la actualización de los procedimientos de toma de muestra. - El jefe de Laboratorio es responsable de las actualizaciones del Documento. 4. Elaboración de la orden o solicitud de examen y rotulación de las muestras: Según el art 15º del reglamento de laboratorios clínicos, los exámenes pueden ser solicitados por: - Un Médico Cirujano - Otros profesionales del equipo de salud habilitados para el diagnóstico o tratamiento de las enfermedades o estados fisiológicos - Requerimiento del propio interesado. Para ello cada profesional emite un documento que individualiza al paciente y explicita el examen requerido. Este documento puede ser, en el caso de pacientes hospitalizados o de urgencia, una orden de solicitud de examen generada en el sistema informático del establecimiento o también una orden directamente por el médico o profesional, en el caso de pacientes de consultorios o ambulatorios. Esta petición de examen deberá contener a lo menos: a.- Membrete o timbre del establecimiento solicitante o del profesional; b.- Nombre, código y/o número de RUN del profesional y/o domicilio del establecimiento; c.- Nombre y apellidos, RUN, edad y/o sexo del paciente. d.- Nombre o código del lugar de procedencia. d.- Identificación de las prestaciones requeridas. e.- Firma del profesional que refrenda la petición (en el caso de orden médica escrita). Los exámenes solicitados en carácter de urgencia deberán tener prioridad en su procesamiento y entrega de resultados. Los exámenes para detección del virus de Inmunodeficiencia Humana (VIH) deberán realizarse de acuerdo a la normativa y reglamentación específica sobre esta materia. Toda solicitud primaria emitida por el profesional pertinente y los registros en la ficha clínica, constituyen el documento formal de solicitud de exámenes y este es la base para generar en el Sistema Informático del Laboratorio (SIL) una orden computacional que será derivada junto a la muestra a las dependencias del laboratorio clínico.(Anexo 20) MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 4 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS Para el caso de las muestras tomadas en el servicio de urgencia la orden de examen es emitida vía SIL por el profesional solicitante y para ese caso el número de historia clínica es reemplazado por el numero de folio que corresponde al número correlativo asignado por paciente atendido en dicha unidad Es requisito para la recepción de una muestra en el laboratorio, que ésta esté acompañada de la solicitud de examen y que presente la identificación respectiva mediante “un rotulo”, que puede ser simple o un código de barras. Este rotulo en ambos casos debe contener a lo menos el nombre y dos apellidos del paciente y el lugar de procedencia. Para el posterior procesamiento de las muestras al interior del laboratorio, es necesario que las muestras tengan un rótulo de código de barras, el cual puede ser emitido directamente en el área de la toma de muestra (servicios clínicos, urgencia, CAE, consultorios) al momento de ingresar la solicitud primaria al SIL o ser generado al interior del laboratorio. Con lo anterior, una muestra debidamente respaldada por el documento oficial, puede presentar un rótulo simple o uno de código de barras. La etiqueta código de barra está estandarizada según tipo de muestra o recipiente, con la información y el tamaño requerido. La información necesaria para la rotulación con código de barra es: Nombre completo del paciente, procedencia, número de solicitud, fecha de recepción (solo cuando es obtenido en la recepción del lab.) y código de barra que contiene los exámenes solicitados. (ver anexo 19) En el caso de las muestras que son derivadas a Barnaffi-Krause (BK), se requiere de documentos adicionales a la orden computacional emitida por el sistema informático, como la orden médica emitida directamente por el médico la que debe incluir RUT y fecha de nacimiento del paciente. Para las muestras que por programas de vigilancia deben ser enviadas al Instituto de Salud Publica (ISP), éstas deben adjuntar el formulario de envío según laboratorio de derivación o estudio en el ISP. Así según sección de destino existen formularios a virología, parasitología etc. Estos formularios deben ser solicitados a la secretaria del laboratorio cada vez que sea necesario realizar una toma de muestra para derivación. El anexo 18 muestra el listado de exámenes que son derivados por nuestro laboratorio a los laboratorios anteriormente señalados. 5. Condiciones del paciente al momento de tomar la muestra: Es responsabilidad de todo el equipo de salud que participa del proceso de la obtención de muestras clínicas, el conocer las condiciones necesarias para realizar una toma de muestra de calidad y en el caso que sea el paciente quien obtenga la muestra, estas instrucciones deben darse por escrito, en forma clara y precisa. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 5 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS El personal que por motivos de su cargo realiza la toma de muestra debe estar debidamente capacitado para conocer aquellos factores que pudiesen ocasionar variaciones importantes en los constituyentes a analizar o pesquisar. Para ello este manual cuenta con la información relevante a cada toma de muestra según su área de procesamiento al interior de la unidad. El anexo 21 detalla los exámenes realizados por el laboratorio con las condiciones necesarias del paciente para la toma de muestra, el transporte y la conservación. 6. Traslado de las muestras Para el traslado de las muestras biológicas se debe remitir a la aplicación del procedimiento “Traslado y Conservación de muestras para exámenes de Laboratorio” que contempla la utilización de un recipiente primario, según sea el tipo de muestra (tubos plásticos para suero y sangre, según estandarización de color, tubos de vidrio estériles, tórulas con medio de transporte, etc.). Este recipiente debe introducirse en un contenedor secundario y en otro terciario según sea el caso. 6.1 Desde los servicios Clínicos hacia el Laboratorio. El traslado de muestras debe realizarse, utilizando el sistema de transporte neumático al vacío de especímenes biológicos, guiado por profesionales del área de la salud desde el lugar de procedencia hacia el laboratorio. Nunca se transportarán muestras, sin que el contenedor esté cerrado correctamente, el tubo de muestra debe ser enviada en doble contenedor de plástico (bolsa), uno para la muestra y otro para documentos. Además no serán sometidas a la exposición al sol y la capacidad de las mismas es de 2 pacientes por bala y/o un máximo de 10 tubos. El tercer contenedor es la bala del sistema neumático. Las muestras sanguíneas serán trasladadas a temperatura ambiente a excepción de los gases arteriales, gases venosos y muestra para amonio que deben venir en una jeringa heparinizada transportada con tapa y en hielo, debe ser enviada inmediatamente al laboratorio. Un sistema alternativo de transporte de muestras es un contenedor plástico con cierre hermético que debe ser utilizado igual que el sistema neumático, el tubo en doble contenedor de plástico (bolsa), uno para la muestra y otro para documentos. El tercer contenedor en este caso es la caja de transporte. 6.2 Desde los Consultorios y consultorio de Especialidades hacia el Laboratorio: Las muestras deben ser trasladadas desde el consultorio al laboratorio clínico del Hospital San Juan de Dios de Los Andes, por un estafeta del consultorio capacitado en la manipulación de muestras. Éstas son transportadas en un maletín plástico con cierre hermético que contiene una gradilla, así los tubos pueden transportarse de manera vertical. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 6 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS El consultorio de Especialidades del hospital transportará las muestras en un carro que contiene un maletín plástico con cierre hermético donde se transportarán las muestras. Para muestras aisladas especialidades debe utilizar el sistema alternativo de transporte de muestras. 6.3 Hacia los Laboratorios de derivación: Las muestras que deben ser derivadas a los laboratorios del ISP, al laboratorio BK o al Laboratorio San Camilo, si no son derivadas luego de ser obtenidas deben ser conservadas en refrigeración según corresponda a la indicación del examen solicitado. El traslado de las muestras de derivación al laboratorio BK se realiza a temperatura ambiente en tubos de polipropileno como contenedor primario, el que debe ir con su orden de examen y un formulario tipo de identificación de las muestras derivadas a BK dentro de un capacho plástico (contenedor secundario), el que a su vez se deposita dentro del sobre de envío (contenedor terciario) Para las muestras derivadas al ISP estas se recolectan en un contenedor primario que a su vez se deposita en un contenedor secundario, que corresponde a un frasco plástico de tapa rosca. Este último se dispone al interior de un cooler que contiene refrigerantes. Junto a este dispositivo, se adjunta el formulario tipo de acuerdo a la muestra, al interior de un cuaderno de registro exclusivo para muestras enviadas al ISP que contiene los datos del paciente, el tipo de examen, la fecha de envío. Este mismo sirve de respaldo de recepción de la muestra, ya que una vez recepcionada la muestra por el personal del ISP, éste procede a timbrar frente al registro del paciente correspondiente. La secretaria del laboratorio prepara los registros y el envío para ser trasladadas por el estafeta del establecimiento o por encomienda, cada 15 días al ISP y según necesidad al laboratorio BK. (Exámenes derivados en anexo 18) Para las muestras derivadas al Laboratorio San Camilo, estas se recolectan en un contenedor primario que a su vez se deposita en un contenedor secundario (Bolsa o caja plástica). Este último se dispone al interior de un contenedor que contiene refrigerantes. 7. Conservación de las muestras: Las muestras que serán procesadas de acuerdo al protocolo de rutina para cada sección, son depositadas en gradillas dispuestas en los mesones de trabajo a temperatura ambiente y son procesadas inmediatamente después de cumplir el proceso de recepción. Para el caso de las muestras de orina, estas deben conservarse refrigeradas hasta el momento de ser procesadas. Cuando existe mucho tiempo de almacenamiento, las muestras sufren alteraciones como por ejemplo, las muestras que son tomadas en la noche y trasladadas al laboratorio al día siguiente en la mañana, la pérdida de CO2 del suero conduce a un aumento del nivel sérico del pH. El pH del suero alcanzará un valor de 8,5 dos horas después de separarlo del coágulo. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 7 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS A este valor alcalino de pH se produce una degeneración de las proteínas y de los factores de la coagulación lo que trae como consecuencia un aumento en los valores del tiempo de tromboplastina parcial activada (TTPA) y del tiempo de protrombina (TP). Estos mismos parámetros se verán también afectados si las muestras no son conservadas en refrigeración, por degradación de factores lábiles (FV- FVII). La glucólisis que ocurre en la sangre total provocará una disminución de la concentración sérica de la glucosa si transcurre mucho tiempo entre la toma de muestra de sangre total y la separación del suero. Las concentraciones disminuyen un 10% dos horas después de estar en contacto el suero con el coágulo. Este mismo efecto provoca aumento de las concentraciones de magnesio, fósforo y potasio. En el Anexo Nº 21 se detalla por cada examen las condiciones de conservación. El almacenamiento de las muestras una vez recepcionadas se realiza dependiendo del tipo de muestra y de la unidad a la que pertenece: - Unidad de Hematología: las muestras con EDTA, se conservan a temperatura ambiente y tapadas en el tubo primario hasta su análisis. Las muestras con citrato se conservan centrifugadas a temperatura ambiente hasta su análisis (hasta 2 horas). - Unidad de hormonas: se almacena congelada una porción de suero obtenida del tubo primario y rotulado con el número correlativo de la muestra, hasta el análisis. - Unidad de Química Clínica: las hemoglobinas glicosiladas son conservadas en sus tubos primarios tapados y refrigerados hasta ser analizadas. - Unidad de Microbiología: los parasitológicos son conservados en PAF a temperatura ambiente hasta su análisis. Leucocitos fecales, rotavirus y adenovirus son refrigerados hasta el momento de ser examinados. Muestras de coprocultivo y secreciones se conservan en su medio de transporte hasta el análisis. 8. Recepción y rechazo de las muestras: Para la recepción de muestras se aplica lo descrito en el procedimiento de “Recepción de muestras para exámenes de laboratorio” donde se describen las actividades propias de esta etapa. El laboratorio realiza exámenes de rutina en horario hábil, luego de este período, las muestras recepcionadas son procesadas de acuerdo al listado de exámenes de urgencia, descrito en el anexo Nº1 Horario hábil de atención: Lunes a Jueves Viernes : 8.00 a : 8.00 a 17.00 hrs. 16.00 hrs. Horario de recepción de muestras: La recepción de las muestras de rutina se realiza hasta las 11:00 hrs de lunes a viernes, ello para asegurar la calidad de las muestras que son tomadas de preferencia en ayuna considerando el tiempo de transporte al laboratorio. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 8 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 8.1 Criterios de rechazo de muestras En el “Procedimiento de criterios de rechazo de muestras”, se describen las situaciones que derivarán del no cumplimiento de las normas, instructivos e instrucciones descritas en este manual para que una muestra sea de calidad y aceptada. Cuando no es posible llevar a cabo el procesamiento de la muestra, se habla de causal de rechazo de muestras, en las que destacan : - Muestras sin rotular. - Discordancia entre solicitud y rotulo del tubo. - Envase incorrecto con respecto a los exámenes solicitados. - Muestra coagulada o hemolizada. - Tubo con volumen de sangre incorrecto o relación sangre/anticoagulante incorrecta. - Baciloscopia derramada, mal rotulada o sin muestra. - Volumen de orina insuficiente. - Transporte inadecuado de la muestra o demora en su envío. - Muestra derramada o con rotura del envase. Si una muestra cumple con los requerimientos de calidad, los exámenes serán procesados en el transcurso de la jornada y de acuerdo a las capacidades del servicio. Cuando exista problema de suministro de insumos y no esté un examen disponible se avisará oportunamente a los Servicios, consultorios y especialidades. Una vez que las muestras son procesadas y validadas de acuerdo a lo establecido en los documentos de analítica y post analítica de cada sección, los resultados de los exámenes son entregados según el “Procedimiento de entrega de resultados del laboratorio” a nuestros usuarios internos y externos. El tiempo de respuesta para los diferentes exámenes procesados al interior de la unidad se describen en el anexo 21. 9. Descripción de la toma de muestras: A continuación se describen las principales consideraciones para obtener muestras de calidad analítica. Desde esta perspectiva tanto el paciente como el personal del equipo de salud que obtiene la muestra deben contar con la información al respecto y es responsabilidad del laboratorio disponer de ella y darla a conocer, ya sea al paciente para que el realice el procedimiento o al personal encargado de realizar la toma de muestra. Es responsabilidad del equipo de salud el manejar la información al respecto e informar adecuadamente al paciente para garantizar así sus derechos. El anexo 2 detalla las prestaciones realizadas por el laboratorio según nombre de examen, sección donde se procesa, tiempo de respuesta y valores de referencia. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 9 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS En general, las muestras derivadas hacia el laboratorio son sanguíneas, líquidos biológicos y fluidos corporales. Dependiendo del tipo de análisis que se le realice a las muestras son las instrucciones o consideraciones que se deben cumplir. Para la mayoría de los exámenes es necesario el ayuno estricto, sin embargo, se detallará más adelante los requerimientos según la determinación que se le realice a la muestra. En términos generales la extracción de toda muestra sanguínea debe realizarse mediante punción venosa con técnica aséptica, directo a la vena, extrayendo la sangre de forma fluida sin producir espuma. Además, debe realizarse luego de haber esperado la evaporación del antiséptico aplicado en la zona de punción. El torniquete aplicado, no debe ser superior en tiempo a un (1) minuto. Para la obtención de las muestras se debe considerar además de lo que este manual propone, lo normado en el Programa de Prevención y Control de infecciones asociadas a la atención en salud, específicamente lo descrito en Técnica Aséptica, Manejo de Riesgos Biológicos, Prevención de Infecciones Asociadas a Procedimientos Invasivos, Precauciones Estándar y Aislamiento disponibles en la biblioteca virtual de www.hospitaldelosandes.cl 9.1 Unidad Hematología: a. Sangre c/citrato de sodio (Tubo mediano c/tapa celeste o azul) (SCIT): Este tubo es utilizado principalmente para la realización de pruebas de coagulación. Se debe considerar que los análisis de TP, TTPK, Fibrinógeno y Producto de degradación del fibrinógeno (PDF), Dímero D, pueden verse afectados por diferentes variables pre-analíticas, tales como: método de extracción de sangre, características de la superficie del tubo en que se colecta la sangre, tipo de anticoagulante y condiciones de almacenamiento y transporte. Muestra: Para pacientes adultos, se deben tomar 2,7 ml de sangre para un tubo plástico tapa celeste, que contiene 0,3 ml de citrato de sodio al 3,2 %. En el caso de los pacientes pediátricos y/o neonatos se toman 0,9 ml de sangre para un tubo plástico tapa celeste que contiene 0,1 ml del anticoagulante. Esta relación de sangre/anticoagulante de 9/1 es crítica y debe respetarse ya que el exceso o defecto de anticoagulante altera significativamente la prueba. La sangre se hace escurrir por las paredes del tubo; después de haber desmontado la aguja con una pinza, hasta completar los 2,7 ml o 0,9 ml según la marca (línea) presente en el tubo, tapar, homogeneizar inmediatamente invirtiendo el tubo varias veces (mínimo 10), no producir espuma. La presencia de cualquier coágulo, por mínimo que éste sea, afecta radicalmente las pruebas de coagulación, por lo que se aconseja tomar una nueva muestra. Una vez tomada la muestra, debe ser enviada inmediatamente al laboratorio ya que debe ser centrifugada antes de 1 hora. Debe ser trasladada a temperatura ambiente en el recipiente de traslado de muestras o a través del sistema de correo neumático. b. Sangre c/EDTA (Tubo mediano c/tapa lila) (SEDTA) Para el óptimo análisis de los exámenes hematológicos como hemograma con VHS, histogramas, recuento de reticulocitos, hematocrito y hemoglobina, es necesario mezclar suavemente la sangre con el anticoagulante inmediatamente después de la recolección de la muestra de sangre, para evitar la formación de coágulos y mantener las condiciones naturales de la sangre. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 10 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS Muestra: En el adulto, se debe tomar 2,5 ml de sangre para un tubo de tapa lila que contiene gotas de EDTA (puede estar liquido o seco) o 1,0 ml en los pacientes pediátricos o neonatos. La sangre se hace escurrir por las paredes del tubo; después de haber desmontado la aguja con una pinza, hasta completar los 2,5 ml o llegar hasta la marca que tiene el tubo, tapar, agitar inmediatamente invirtiendo el tubo varias veces (mínimo 10), no producir espuma. La viabilidad de los elementos sanguíneos analizados es variable por lo que se recomienda enviar la muestra antes de las 2 horas desde su recolección. Mantener a temperatura ambiente todo el tiempo. Valores de Referencia, Tipo de Muestra y Tiempo de respuesta. Ver anexo 2. 9.2 Unidad Bioquímica: a. Sangre total (Suero): (Tubo mediano c/tapa color rojo y/o amarilla) (STOT): Muestra: Para su obtención se debe tomar entre 4 y 5 ml. de sangre, para un tubo plástico sin anticoagulante. Retirar la aguja y dejar escurrir la sangre por las paredes internas del tubo, sin producir espuma ni adicionar la que hay en la jeringa, tapar, no agitar y dejar en posición vertical hasta que coagule. La observación de esta metódica garantiza que se evitará la hemólisis. Dependiendo del tipo de análisis que se realizará al suero se detallan distintas consideraciones para la toma de muestra. Así tenemos indicaciones de toma de muestra para determinación de hormonas (anexo 12), para determinación de triglicéridos (anexo 15) y consideraciones para toma de muestra para exámenes sin determinación de triglicéridos (anexos 14). b. Sangre c/ fluoruro (Tubo mediano c/tapa gris o blanca) (SFLO): Muestra: Se debe tomar 2,5 ml de sangre para un tubo plástico que contiene gotas de fluoruro de sodio (puede estar liquido o seco). La sangre se hace escurrir por las paredes del tubo; después de haber desmontado la aguja con una pinza, hasta completar los 2,5 ml o hasta llegar a la marca que tiene el tubo, tapar, agitar inmediatamente invirtiendo el tubo varias veces (mínimo 10), no producir espuma. c. Sangre (arterial o venosa) c/ heparina en jeringa c/tapón (SHEP): Dada la complejidad y riesgo de esta técnica, sólo debe ser ejecutada por un profesional de enfermería y se utiliza para la determinación de gases arteriales o venosos y para el amonio. Generalmente se emplea sangre arterial que se extrae en una jeringa que se ha lubricado previamente con heparina. No es necesario agregar más heparina de la que ha quedado en las paredes internas de la jeringa y aguja. Muestra: Tomar 2 ml de sangre, colocar la jeringa en posición vertical, eliminar las burbujas, y sellarla con un tapón de goma o dispositivo tapón rojo. Comprobar el hermetismo tirando del embolo. Mezclar rotando la jeringa varias veces entre las manos. Transportar prontamente en hielo al laboratorio. d. Sangre c/ heparina en tubo mediano o pequeño tapa verde (SHEP): Muestra: En el adulto, se debe tomar 2,5 ml de sangre para un tubo de tapa verde que contiene gotas de Heparina o 1,0 ml en los pacientes pediátricos o neonatos. La sangre se hace escurrir por las paredes del tubo; después de haber desmontado la aguja con una pinza, hasta completar los 2,5 ml o llegar hasta la marca que tiene el tubo, tapar, agitar inmediatamente invirtiendo el tubo varias veces (mínimo 10), no producir espuma. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 11 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS Este tubo puede utilizarse como alternativa para algunas determinaciones que requieren suero. e. Orina de 24 horas ó 12 horas (OR24) (OR12): Esta toma de muestra se utiliza para Clearence de creatinina, calciurias y uricosurias y nitrógeno ureico en 12 o 24 hrs. Se debe comenzar y terminar la recolección con la vejiga vacía, de preferencia en la mañana para estandarizar las condiciones del paciente en relación a su actividad, comidas, horas de sueño etc. Y en caso de realizar un seguimiento de estos parámetros, mantener estas condiciones para las próximas determinaciones. Tener presente que la hora de término de la recolección esté dentro del horario de atención del laboratorio. Se hace orinar al paciente y esa primera muestra se elimina (vejiga vacía), y desde ese momento se recolecta toda la orina por el periodo de tiempo en estudio (24 ó 12 hrs.). Llegada la hora del término de la recolección se hace orinar al paciente incluyendo en todo el volumen esta última muestra (vejiga vacía). Remitir toda la orina al laboratorio, indicando si se trata de 12 o 24 horas. (Ver anexo 10). f. Orina aislada (OR): La orina debe recogerse después de un aseo genital prolijo (agua y jabón), directamente de la uretra a un envase limpio y seco. No deben transcurrir más de dos (2) horas de tomada la muestra para su procesamiento en el laboratorio. De no ser posible el envío inmediato, la muestra deberá guardarse a temperatura de refrigeración (Ver anexo 13). No debe contaminarse con deposiciones (niños) y en la mujer evitar la contaminación con secreciones vaginales o vulvares. El volumen de muestra no debe ser menor a 10 ml. g. Deposición para sangre oculta(DEP): Para este examen no se requiere de una dieta previa y se utiliza una sola muestra. Muestra: Con un palito tomar un poco de deposición, de preferencia aquella de aspecto más negro y depositarla en un frasco pequeño que esté limpio y seco. Sirve cualquier muestra del día. No contaminar con orina (ver anexo 7). h. Deposición para pH y Test de Benedit (DEP): Muestra: Con un palito tomar una porción de la deposición (la de peor aspecto), depositarla en un frasco pequeño que esté limpio y seco (frasco entregado por el laboratorio). Enviar al laboratorio lo antes posible. Poner todos los datos del paciente en el frasco. i. Sangre para el Test de tolerancia a la glucosa: a.- Adulto o embarazada: Muestra en ayuno 75 gr. de Glucosa disuelta en aprox. 200 cc de agua Beber la glucosa en no más de 5 minutos. Muestra a las dos (2) hrs. después de la Glucosa (Ver anexo 11) b.- Niños: Muestra en ayuno 1,75 gr. de Glucosa por kilo de peso, con un máximo de 75 gr. en aprox. 200 cc de agua Beber la glucosa en no más de 5 minutos. Muestra a las dos (2) hrs. después de la Glucosa. (Ver anexo 11) MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 12 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS j. Sangre para medir Niveles plasmáticos de drogas (STOT): Para la determinaciones de niveles plasmáticos de Fenobarbital, Carbamazepina, Acido valproico, Fenitoina y Litio se requiere que la petición de este examen contenga los datos de fecha y hora de la ultima dosis, hora de la toma de muestra y dosis en mg/día. Muestra se toma en ayuno, sangre sin anticoagulante en un tubo tapa roja y normalmente antes de la administración de la dosis de la mañana (cuando la tiene). Enviar al Laboratorio de inmediato. k. Estudio de líquido cefalorraquídeo (LCR): La muestra debe ser obtenida por un médico entrenado en la técnica de punción lumbar. El LCR se recolecta en un tubo estéril sin anticoagulante, 2 cc mínimo para el estudio bacteriológico, y otro para estudio citológico-citoquímico. Rotular el tubo con el nombre completo del paciente, servicio clínico, fecha y tipo de muestra. Enviar de inmediato la muestra al laboratorio, solicitando Gram, cultivo, citológico-citoquímico. l. Estudio de líquido ascítico: Estas muestras se obtienen generalmente por punción percutánea, por lo tanto, se debe realizar un riguroso aseo y antisepsia de la zona que se va a puncionar para evitar la contaminación de la muestra con flora cutánea. Las muestras deben ser obtenidas por un médico experimentado en la técnica. Se toman dos muestras en tubos estériles. Una de las muestras en un tubo sin anticoagulante, la que será usada para el estudio bacteriológico. La otra fracción de muestra en un tubo con anticoagulante (dos gotas de heparina por cada cc de líquido a extraer) el que será usado para el examen citológico-citoquímico. Rotular las muestras con el nombre completo del paciente, procedencia y tipo de muestra. El rotulo debe indicar claramente cuál es el tubo para cultivo y cuál para el estudio citológicocitoquímico (con anticoagulante). Enviar de inmediato al laboratorio a temperatura ambiente. m. Estudio de líquido sinovial o articular y pleural: Se toman dos muestras en tubos estériles. Una de las muestras en un tubo sin anticoagulante, la que será usada para el estudio bacteriológico. La otra fracción de muestra en un tubo con anticoagulante (dos gotas de heparina por cada cc de líquido a extraer) el que será usado para el examen citoquímico. Rotular las muestras con el nombre completo del paciente, procedencia y tipo de muestra. El rotulo debe indicar claramente cuál es el tubo para cultivo y cuál para el estudio citológicocitoquímico (con anticoagulante). Enviar de inmediato al laboratorio a temperatura ambiente. n. Estudio de líquido amniótico: Se toman dos muestras, las que en ningún caso deben llevar anticoagulante. El tubo para el estudio químico de líquido amniótico debe venir protegido de la luz (envuelto en papel calco). Rotular las muestras con el nombre completo del paciente, procedencia y tipo de muestra. Enviar de inmediato al laboratorio a temperatura ambiente. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 13 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS Valores de Referencia, Tipo de Muestra y Tiempo de respuesta. Ver anexo 2. 9.3 Unidad TBC: a. Baciloscopía y cultivo de Koch: El examen debe venir solicitado en un formulario especial (programa de TBC). Muestra: La muestra debe ser fruto de una tos profunda. No debe ser saliva. Se toman dos muestras en días consecutivos y en una caja plástica negra que entrega el laboratorio. Enviar prontamente (Ver anexo 6). En el formulario se deben consignar todos los datos solicitados, ello permitirá que la muestra se canalice en forma correcta (ó va a cultivo corriente ó se le hace estudio de sensibilidad ó se envía al I.S.P. para un estudio más completo). b. Orina para baciloscopía: Muestra: Se requieren de 6 muestras de orina de días sucesivos. La muestra debe ser de segundo chorro y se debe tomar en frascos estériles que entrega el laboratorio. Se toman aprox. 100 ml de orina. Enviar inmediatamente al laboratorio; no pueden transcurrir más de dos (2) horas para su procesamiento. La petición del examen debe hacerse en el formulario correspondiente (programa de TBC), y por ser un examen que se envía a San Felipe la muestra debe estar antes de las 8,30 en recepción del laboratorio. Valores de Referencia, Tipo de Muestra y Tiempo de respuesta. Ver anexo 2 9.4 Unidad Parasitología: a. Parasitológico seriado: Muestra: En el frasco de boca ancha, entregado por el laboratorio, al cual se le ha agregado solución fijadora PAF (25 ml aprox.), depositar con un palito una muestra de deposición del tamaño de una nuez, de cualquier hora del día, y mezclar con el líquido hasta formar una pasta. Repetir este procedimiento día por medio hasta completar tres (3) días. Todas las muestras van en el mismo frasco. Enviar al laboratorio dentro del horario de atención. Guardar el frasco en un lugar fresco (ver anexo 8). b. Test de Graham: Las muestras deben tomarse en las mañanas, al levantarse y antes de hacerse el aseo o bañarse. Muestra: Antes de acostarse hacerse un buen aseo rectal. En la mañana siguiente tomar una lámina, despegar la cinta hasta la mitad y la parte adhesiva de la cinta pasarla por los bordes del ano, pegar nuevamente la cinta al vidrio. En uno de los extremos colocar el nombre del paciente. Se requiere de cinco (5) muestras tomadas en días sucesivos. Llevar las cinco muestras al laboratorio (ver anexo 9). c. Acarotest : Solicitar la toma de muestra al Tecnólogo Médico de la sección de Bacteriología. El paciente no debe bañarse el día de la toma de muestra, tampoco debe estar usando cremas, talco y lociones en la piel. Observar las zonas afectadas y ubicar las que estén con mayor lesión. Raspar con la MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 14 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS lanceta hasta obtener trozos de piel en escamas. Pegar el scotch en la zona que ha sido raspada y ponerlo nuevamente en el porta objeto. Realizar lo mismo en las distintas zonas afectadas hasta completar las 5 muestras. Valores de Referencia, Tipo de Muestra y Tiempo de respuesta. Ver anexo 2 9.5 Unidad Microbiología: El objetivo fundamental de los estudios de cultivos microbiológicos, ha sido el aislar el o los agentes etiológicos de una probable infección con el fin de apoyar al médico clínico en la confirmación diagnóstica y orientar el uso racional de antimicrobianos en el tratamiento del paciente. El sistema de vigilancia para las infecciones asociadas a la atención en salud (IAAS) vigente, establece apoyo adicional, en algunos criterios de notificación de la IAAS, cuando la definición requiere de identificación etiológica. La calidad del examen no solo depende de un proceso analítico correcto, sino también de una correcta toma de muestra. En esta etapa se deben considerar factores tales como: preparación del paciente, horario de la obtención, traslado y conservación de la muestra, identificación correcta de la muestra, etc. Por ello, una muestra mal tomada, escasa o mal transportada, determinará un posible fallo en la recuperación de los agentes patógenos, lo que puede inducir a errores diagnósticos, e incluso a un tratamiento inadecuado del enfermo a. Consideraciones generales: 1. La viabilidad de los microorganismos disminuye por: - pH ácido del pus - la disminución de la temperatura - la desecación Para evitar esta pérdida y obtener el máximo rendimiento de los exámenes microbiológicos, se debe acortar al mínimo el tiempo transcurrido entre la extracción de la muestra y su posterior siembra en el medio específico del laboratorio. La desecación es uno de los factores que contribuye a disminuir el rendimiento del cultivo, por lo tanto, la muestra tomada con tórula seca es la más inadecuada. 2. La utilidad final de una muestra bacteriológica depende en gran parte de la calidad de la muestra tomada. Con el propósito de disminuir el grado de contaminación, ésta debe ser realizada con técnica aséptica, usando material estéril. 3. La solicitud del examen y la identificación del envase de la muestra debe aportar datos que orienten al laboratorio: nombre del paciente, ubicación, tipo de muestra, fecha y hora de su obtención, diagnóstico clínico, uso de antibióticos, etc. 4. La toma de cultivos seriada está obsoleta por no existir evidencia científica que la avale. El cultivo se tomará dependiendo de la evolución clínica del paciente. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 15 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 5. Indicación de cultivo: El diagnóstico de infección es clínico y se basa en la presencia de síntomas y signos clínicos en el sitio de la lesión. El cultivo se solicita sólo: - Con diagnóstico de infección - Si se requiere confirmar la etiología con fines epidemiológicos - Si el clínico decide que el estado del paciente amerita un tratamiento sistémico con antibiótico. 6. Las muestras deben ser tomadas previo a tratamiento con antibióticos 7. Traslado. Las muestras tomadas deben ser enviadas inmediatamente al laboratorio (en un lapso no superior a 30 minutos) para su posterior siembra en un medio de cultivo. Si esto no es posible, conservarlas a temperatura ambiente hasta su envío .No refrigerarlas. - La toma de muestra es un proceso simple, pero fundamental para el buen rendimiento del examen bacteriológico solicitado. - La muestra debe ser tomada en forma correcta, por una persona idónea, empleando equipo estéril y las mayores precauciones de asepsia. - La muestra debe ser representativa del proceso infeccioso, debe obtenerse en cantidad suficiente para permitir el estudio completo y debe enviarse al laboratorio tan pronto como se tome y debe indicar en forma precisa el sitio de toma de muestra (Ej. herida superior brazo izquierdo). - Especial cuidado deberá tenerse frente a muestras en las que se desea investigar Meningococo, Hemophilus y Pneumococo, por su baja resistencia a las condiciones ambientales y por su capacidad de síntesis de enzimas autolíticas (las bacterias se destruyen a sí mismas). b. Tipo de muestras requeridas: 1. Urocultivo: - Se tomará muestra de orina para cultivo a todo paciente que esté con catéter urinario permanente y se sospeche que esté cursando una infección urinaria. No se recomienda tomar muestras a intervalos regulares si no hay signos de infección - La muestra de orina se puede obtener por medio de: punción vesical, de segundo chorro (si se indicó retiro de sonda), o a través de sonda nueva, (si se indicó cambio de sonda). - Especificar en la etiqueta del tubo, si la muestra fue tomada por punción vesical, segundo chorro o por sonda. La muestra debe ser la primera orina de la mañana y en caso de urgencias se puede tomar la muestra solo si se tiene una retención vesical de tres (3) horas como mínimo. Las muestras deben ser tomadas en un tubo estéril y enviadas inmediatamente al laboratorio ya que la permanencia a temperatura ambiente favorece la multiplicación bacteriana, lo que altera en forma significativa el recuento de gérmenes. Las muestras deben ser sembradas antes de transcurrida una hora (1) de tomada, por lo tanto si no se puede enviar en forma inmediata al laboratorio, la muestra debe mantenerse en refrigeración, pero no más de cuatro MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 16 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS (4) horas. Las muestras con valor informativo (como controles) deben tomarse antes de la administración de los antibióticos. Si el enfermo ya estuviera en tratamiento, éste deberá ser suspendido y esperar 48 horas y posteriormente tomar la muestra. Aun en bajas concentraciones de antibióticos en la muestra a estudiar se puede producir una inhibición del crecimiento bacteriano en el estudio “in Vitro“. Todas las muestras deben rotularse en forma adecuada y acompañarse de una orden medica de examen según indicaciones. Se debe especificar en la etiqueta del tubo si la muestra fue tomada por punción vesical, segundo chorro o si se utilizó una sonda y si existe tratamiento previo con antibióticos. 1.1 Orina de 2° chorro: La utilización de este método depende de la edad, sexo y habilidad del paciente para cooperar en la toma de muestra. Debe instruirse al paciente, ya sea, en forma verbal o por escrito si es él mismo quien va a tomar la muestra, o de lo contrario debe ser tomada por personal adiestrado. a.En pacientes mujeres: Lavarse las manos con agua y jabón, enjuagar con abundante agua y secar con toalla de papel desechable. Efectuar un prolijo aseo de los genitales externos de la paciente, por arrastre, para lo cual se deben separar los labios mayores y luego limpiar el orificio uretral con un apósito y solución jabonosa. Posteriormente enjuagar con abundante agua. En lo posible taponar vagina para evitar la contaminación con secreciones vaginales o sangre proveniente de la menstruación. Emitir un primer chorro de orina y eliminarlo, cortar la micción y reiniciarla recibiendo la orina directamente en un frasco o tubo estéril. La cantidad mínima requerida es de 10 ml. Enviar prontamente al laboratorio. (Ver anexo 16). b.En pacientes hombres: Lavarse las manos con agua y jabón, enjuagar con abundante agua y secar con toalla de papel desechable. Efectuar un prolijo aseo de los genitales externos del paciente, para lo cual se debe deslizar hacia atrás el prepucio para limpiar el glande con un apósito y solución jabonosa. Posteriormente enjuagar con abundante agua. Emitir un primer chorro de orina y eliminarlo, cortar la micción y reiniciarla recibiendo la orina directamente en un frasco o tubo estéril. La cantidad mínima requerida es de 10 cc. Enviar prontamente al laboratorio. (Ver anexo 17). 1.2 Orina aséptica por técnica de recolector: No es una buena muestra ya que generalmente se contamina con flora perineal. Es útil solo si el cultivo resulta ser negativo o si se aísla en recuento significativo una especie uropatógena única. Para este procedimiento se recomienda el cambio de recolector cada 30 minutos hasta obtener la muestra de orina. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 17 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS Esta técnica se utiliza en lactantes y preescolares y consiste en adosar un dispositivo de plástico (recolector estéril) a los genitales del lactante previamente aseados tal como se indica en la técnica de recolección de orina 2° chorro. Esta bolsita se debe fijar a la piel con una cinta adhesiva y no debe permanecer más de una hora instalada. Se observa a diferentes intervalos (máximo media hora) si el lactante ha orinado. De ser así, se retira el recolector y se envía de inmediato al laboratorio 1.3 Cateterización Vesical: Esta es una técnica riesgosa que puede llevar a una contaminación ascendente y por lo tanto se debe realizar excepcionalmente. Está indicada en personas que no pueden orinar libremente por causas tales como: inflamación prostática, estrechez uretral, cálculos, parálisis vesical, etc. Debe ser indicada por el médico, el procedimiento debe cautelar el mantener en todo momento la asepsia para evitar el arrastre de gérmenes con la sonda hacia la vejiga. Colocar al paciente en decúbito dorsal y con las piernas flectadas. Realizar un aseo genital externo muy prolijo. Utilizar agua jabonosa, enjuagar con abundante agua. El operador debe usar guantes estériles previo lavado de las manos. Aislar la zona genital con un paño estéril que tenga un orificio. Colocar en el riñón estéril la sonda vesical estéril a utilizar. Nº 6, 8, 10 ,12 y 14 (excepcionalmente Nº 4 cuando el paciente lo requiere). Lubricar la sonda con vaselina estéril. Introducir la sonda por la uretra unos 6 a 10 cm. en la mujer y unos 15 cm. en el hombre. Recibir la orina de segundo chorro en frasco estéril. Rotular para el envío al laboratorio. Retirar la sonda cuidadosamente. Enviar la muestra al laboratorio. 1.4 Catéter de permanencia prolongada: La muestras a estos pacientes se toman solo en caso de que esté cursando una infección urinaria o se haya indicado el cambio o retiro de sonda. (Actuar de acuerdo a la norma del Programa de IAAS sobre catéter urinario a permanencia). No se recomienda tomar muestras a intervalos regulares si no hay signos de infección. Muestra: La muestra de orina se puede obtener por medio de punción vesical, de segundo chorro si se indicó retiro de sonda, a través de una sonda nueva en el caso de que se haya indicado cambio de sonda o si el catéter ha sido recientemente instalado (no más de 24 hrs), obtener la muestra por punción de la sonda. En este último caso se debe limpiar la superficie externa del catéter con alcohol de 70% y esperar que seque. La punción se efectúa en un ángulo de 30º en el sitio indicado para ello. No debe pinzarse el catéter antes de obtener la muestra. Las otras técnicas ya fueron descritas en párrafos anteriores y corresponde proceder de la forma señalada. Se debe realizar aseo genital previo por arrastre con agua y jabón. Se debe recolectar un volumen de entre 10 y 15 ml. Una vez tomada la muestra se debe enviar al laboratorio lo antes posible. Especificar en el tubo de muestra si ésta fue tomada de punción vesical, segundo chorro o por sonda. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 18 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 1.5 Aspirado supra-púbico (Punción vesical): Es el método más preciso ya que evita la contaminación de la orina con la flora bacteriana de la uretra, pero como es un método que produce traumatismo de la mucosa vesical se reserva solo para algunos casos: lactantes, niños de corta edad, adultos con facultades mentales perturbadas o trastornos motores. El paciente no debe orinar a lo menos por 2 horas antes del proceso. Se considera preparado cuando el deseo urgente de orinar permite extraer la muestra por presión supra-púbica. Muestra: Un área de la piel en la línea media, de aproximadamente 5 cm., arriba de la sínfisis del pubis se aseptiza con povidona yodada. Puede usarse anestesia local, pero no es necesario para la mayoría de los pacientes. Utilizar una aguja del Nº 22 estéril de 4 cm. de largo o aguja especial Nº 22 unida a una jeringa estéril de 20 ml. Introducir a través de la piel, fascia y pareo de la vejiga con un movimiento rápido. Se aspira el contenido de la vejiga y se coloca en un tubo estéril. Enviar al laboratorio lo antes posible. 2. Hemocultivo: - La toma de muestra debe ser realizada por un profesional debidamente capacitado en la técnica (Enfermera, Matrona o Tecnólogo Medico). - La toma de muestra debe realizarse en relación con la aparición de síntomas (escalofríos, fiebre) que es el momento de mayor rendimiento. - Cuando se indique tomar hemocultivos, los frascos con medio de cultivo y adaptadores para la toma de muestra, deben retirarse en el laboratorio. Los frascos se rotularán en el lugar indicado, con el nombre completo del paciente, fecha, hora, servicio clínico y numero de la muestra (I o II) - Los frascos deben estar a temperatura ambiente, protegidos de la luz solar y serán devueltos al laboratorio si no son utilizados. - La preparación del sitio de punción será con un lavado con agua jabonosa y pincelación con tórula con alcohol de 70°. - El profesional que toma la muestra deberá hacer un lavado prolijo de sus manos y antes de palpar el sitio de punción pincelará sus dedos con alcohol de 70°. Muestra: La punción debe ser directa a la vena o arteria y se debe extraer la cantidad de sangre que corresponda, según edad del paciente, llenando el frasco hasta la marca hecha por el laboratorio: - Adulto : : Rangos 3 - 10 ml (Optimo: 8 - 10 ml) - Pediátrico y recién nacidos : Rangos 0.5 - 3 ml (Optimo: 1 - 3 ml) - - Habitualmente el número de muestras es de dos por episodio séptico, que se deben tomar en forma simultánea pero con sitios de punción diferentes porque si se contaminan se pierden las dos muestras. No se recomienda tomar un hemocultivo solitario, se ha observado que su rendimiento es malo. El tomar más de 2 hemocultivos intermitentes en 24 horas no aumenta la positividad. Previo a vaciar la sangre a los frascos, se debe retirar las tapas plásticas de estos y pincelar la goma con alcohol de 70°. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 19 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS - Si se van a tomar muestras de sangre para varios exámenes, se debe vaciar primero sangre para el hemocultivo y después para el resto de los exámenes. Una vez tomadas las 2 muestras deben ser trasladadas de inmediato al Laboratorio. Es importante indicar en la orden el diagnóstico presuntivo, dado que el periodo de incubación adecuado de las muestras varía en cada caso. En general el tiempo de cultivo varia de 5 días para septicemias, 14 días para EBSA y 21 días para Brucelosis. Para evaluar la calidad de la toma de muestra y rendimiento, el laboratorio llevará registro, por servicio del número total de muestras tomadas, número de hemocultivos positivos, contaminados y negativos. Importante : Nunca sobrepasar el volumen máximo de llenado, Siempre llegar al volumen mínimo, Lo ideal es completar los volúmenes óptimos, No rayar ni ensuciar el código de barra del frasco. 3. Muestra de Catéter Venoso Central: Las muestras deben tomarse solo en aquellos pacientes con catéter venoso central que presenten fiebre mayor a 38ºC (temperatura axilar) sin foco infeccioso aparente que la explique o que presenten signos de infección a nivel de herida cutánea donde se inserta el catéter, o en el trayecto subcutáneo y/o la presencia de una flebitis. Las muestras deben considerarse como potencialmente infecciosas y deben manipularse siguiendo las precauciones para el manejo de sangre y fluidos corporales. La toma de muestra debe ser realizada por un profesional debidamente capacitado en la técnica (Enfermera). Con el propósito de disminuir el grado de contaminación, la toma de muestra debe ser realizada con técnica aséptica, usando material estéril. El laboratorio de microbiología no procesará aquellas muestras cuyas condiciones no sean las adecuadas, por ejemplo: - No estén bien rotuladas - Punta de catéter que vengan en cualquier otro recipiente que no sea una placa Petri estéril proporcionada por el laboratorio - Puntas de catéter con más de 5 centímetros de longitud - Muestras para hemocultivos cuantitativos que sean tomadas en jeringas de distinto volumen y que contengan menos de 1,5 ml de sangre cada una - Muestras para hemocultivos cuantitativos que vengan selladas con cualquier otro dispositivo que no sea tapa estéril. - Muestras coaguladas - Muestra para hemocultivos cuantitativos, si inmediatamente luego de tomadas, se retira el catéter. En este caso el laboratorio sólo procesará la punta del catéter. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 20 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 3.1 Toma de muestra con retiro de catéter: El objetivo es obtener un trozo de catéter (de 3-5 cm desde la punta) en condiciones asépticas para estudiar la presencia de microorganismos en éste. Material: Placa Petri estéril, equipo de curación estéril (pinzas, tijeras, gasa), povidona yodada, guantes estériles, dos frascos para hemocultivos periféricos Punta del Catéter: Limpiar la piel donde se inserta el catéter con suero fisiológico estéril. Pincelar con povidona yodada Hacer un campo estéril Con una pinza y tijeras estériles cortar el punto que fija el catéter a la piel y traccionar suavemente éste hacia el exterior. Cortar con tijeras un trozo de 3 – 5 cm desde la punta del catéter. Guardar la punta del catéter en una placa Petri estéril. Simultáneamente se deben tomar dos hemocultivos periféricos del paciente (tomados según norma para hemocultivos) 3.2 Toma de muestra sin retiro del catéter: Hemocultivos cuantitativos La confirmación de que una bacteremia corresponde a una infección asociada al catéter, se basa en demostrar la presencia del germen responsable en el catéter. Ello tradicionalmente se realiza mediante la retirada del catéter y su posterior procesamiento microbiológico (técnica de Maki). Actualmente existen métodos alternativos que permiten demostrar que la infección es causada por el catéter sin que sea obligatoria su retirada (técnica de hemocultivos cuantitativos). En la técnica de Maki, si el recuento de colonias es < a 15 UFC, se interpreta como una contaminación del catéter al momento de retirarlo. Si el recuento de colonias es >ó = a 15 UFC, se interpreta como una colonización del catéter, la cual puede ser la causa de la fiebre del enfermo. En la técnica de Hemocultivos cuantitativos, se interpreta como infección del torrente sanguíneo asociado a catéter venoso central, cuando se obtengan cultivos positivos con el mismo agente etiológico y con un recuento de colonias 5 veces mayor en sangre de catéter que en vena periférica. Por ejemplo: - Muestra sangre catéter: Staphylococus aureus 50 UFC/ml - Muestra sangre periférica: Staphylococus aureus 10 UFC/ml Corresponderá al médico tratante interpretar los resultados según la clínica del paciente si se da por ejemplo el siguiente caso : - Muestra sangre catéter: Staphylococus aureus 20 UFC/ml - Muestra sangre periférica: Staphylococus aureus 5 UFC/ml El objetivo es obtener dos muestras de sangre de 1,5 ml cada una, en forma aséptica, una proveniente del catéter, y la otra de una vena periférica para estudiar presencia de microorganismos en ambas y así poder orientar al clínico en el diagnóstico de una bacteremia asociada a catéter. Material: Dos jeringas de 3 ml, heparina estéril, tapas estériles (para sellar las jeringas), tórulas de algodón, solución jabonosa, alcohol de 70º MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 21 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS Muestra: Se tomarán dos muestras de sangre simultáneamente, una proveniente del catéter venoso central y otra de una vena periférica, las que se tomarán en jeringas iguales de 3 ml cada una, de la siguiente manera: Con jeringa heparinizada, tomar 1.5 ml de sangre a través del C.V.C. Si el catéter tuviera más de 1 lumen se deben enviar muestras de cada uno de ellos en jeringas separadas. Cada jeringa debe venir identificada con el nombre del paciente y el lumen de donde se tomó la muestra (ejemplo: lumen 1, 2, etc.) Con otra jeringa, también heparinizada, tomar 1.5 ml de sangre de una vena periférica, previo aseo de la piel a puncionar y antisepsia. Las jeringas deben enviarse al laboratorio sin aguja y selladas con tapa estéril, transportándose a temperatura ambiente. Frente a la presencia de signos de infección local se puede tomar una muestra para cultivo de cualquier exudado del sitio de salida. 4. Líquido cefalorraquídeo (LCR): La muestra debe ser obtenida por un medico entrenado en la técnica de punción lumbar. La punción se debe realizar antes de la administración de antibióticos y con técnica aséptica estricta El LCR se recolecta en un tubo estéril sin anticoagulante, 1 a 2 cc para el estudio bacteriológico. Rotular el tubo con el nombre completo del paciente, servicio clínico, fecha y tipo de muestra (LCR). Se deben tomar dos muestras en tubos estériles, una de las cuales es para el estudio bacteriológico (cultivo y Gram) y la otra es para el estudio citológico-citoquímico. Enviar de inmediato la muestra al laboratorio, solicitando tipo de cultivo, tinta china, Gram, directo. 5. Líquido ascítico: Estas muestras se obtienen generalmente por punción percutánea, por lo tanto, se debe realizar un riguroso aseo y antisepsia de la zona que se va a puncionar para evitar la contaminación de la muestra con flora cutánea. Las muestras deben ser obtenidas por un médico experimentado en la técnica. Se toman dos muestras en tubos estériles. Una de las muestras en un tubo sin anticoagulante, la que será usada para el estudio bacteriológico. La otra fracción de muestra en un tubo con anticoagulante (dos gotas de heparina por cada cc de líquido a extraer) el que será usado para el examen citológico-citoquímico. Rotular las muestras con el nombre completo del paciente, procedencia y tipo de muestra (Liquido Ascítico). Además el rotulo debe indicar claramente cuál es el tubo para cultivo y cuál para el estudio citoquímico (con anticoagulante). Enviar de inmediato al laboratorio a temperatura ambiente. 6.-Liquido sinovial, articular o pleural: Se toman dos muestras. Una de las muestras en un tubo sin anticoagulante, la que será usada para el estudio bacteriológico. La otra fracción de muestra en un tubo con anticoagulante (dos gotas de heparina por cada cc de líquido a extraer) el que será usado para el examen citoquímico. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 22 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS Rotular las muestras con el nombre completo del paciente, procedencia y tipo de muestra. Además el rotulo debe indicar claramente cuál es el tubo para cultivo y cuál para el estudio citoquímico (con anticoagulante). Enviar de inmediato al laboratorio a temperatura ambiente. 7.-Liquido amniótico: Se toman dos muestras, las que en ningún caso, deben llevar anticoagulante. El tubo para el estudio químico de líquido amniótico debe venir protegido de la luz (envuelto en papel calco). Rotular las muestras con el nombre completo del paciente, procedencia y tipo de muestra. Enviar de inmediato al laboratorio a temperatura ambiente. 8.-Desgarros y expectoraciones: Se tomará muestra de expectoración a todo paciente que después de 48 hrs de hospitalización presente cuadro respiratorios inferior, con tos y expectoración. Esta muestra puede ser obtenida desde un paciente consciente que comprenda las instrucciones. El personal a cargo de la toma de muestra (Enfermera, Técnico Paramédico, Kinesiólogo) debe asistir al paciente durante la obtención de la muestra. Se debe explicar el procedimiento al paciente para obtener su colaboración y se recomienda la toma de muestra en la primera expectoración de la mañana. Muestra: El paciente se debe lavar los dientes y luego realizar enjuagatorios con suero fisiológico estéril o simplemente con agua, con el objeto de eliminar los restos de partículas alimenticias y los gérmenes saprofitos de la cavidad bucal. Mediante tos espontánea o provocada, eliminar el esputo (debe estar libre de saliva) directamente a una placa Petri estéril. El volumen de la muestra debe ser entre 1 a 3 ml El personal que toma la muestra acompañará al paciente hasta que éste elimine una expectoración adecuada. Si este procedimiento no da resultado se pedirá ayuda al Kinesiólogo Si el paciente está comprometido de conciencia, la muestra se obtendrá por aspiración de secreciones. Rotular la placa con cinta indicando el nombre completo del paciente, servicio clínico, fecha y tipo de muestra. Enviar la muestra inmediatamente al laboratorio para ser sembrada. 9. Secreción faríngea: Cultivo corriente: El cultivo de secreción faríngea incluye el estudio en cultivo corriente y búsqueda de Neisseria meningitidis. - Colocar al paciente frente a una buena fuente de luz. . Explicarle en que consiste el examen para lograr su cooperación. - Hacerle pronunciar la letra A - Simultáneamente usando un baja lengua, frotar una tórula estéril con firmeza contra la pared posterior de la faringe, detrás de la úvula y las amígdalas tocando cualquier exudado faríngeo. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 23 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS - Retirar cuidadosamente la tórula para no tocar la lengua, la úvula y pared de la boca y contaminar la muestra con saliva. - La tórula se introduce en un tubo estéril el que debe ser rotulado de inmediato, indicando nombre completo del paciente, servicio clínico, fecha y tipo de muestra. - La muestra debe ser enviada de inmediato al laboratorio y de no ser posible, considerar que el máximo de tiempo de viabilidad de los gérmenes a temperatura ambiente es de dos horas. Para periodos más largos de transporte o de espera, la muestra deberá tomarse con algún medio de transporte, como Stuart (torulines con medio de transporte). La muestra no debe refrigerarse. 10. Secreción nasal: Existen dos (2) opciones para la toma de este tipo de muestra: a.-Cultivo nasal en caso de sinusitis: - Se realiza utilizando una tórula estéril la cual debe humedecerse en suero fisiológico estéril. - Ésta se introduce en una fosa nasal, profundamente, sobrepasando el meato medio, en dirección paralela al piso de la fosa nasal. - Se frota suave, pero firmemente, dando un giro de tal manera que la tórula se empape con el pus allí localizado. - Se retira suavemente sin tocar las aletas de la nariz y se introduce en unos tubos estériles. - Rotular inmediatamente con el nombre del paciente, servicio clínico, fecha y tipo de muestra. - Enviar de inmediato al laboratorio y de no ser posible, considerar que el máximo de tiempo de resistencia de los gérmenes a temperatura ambiente es de dos horas. Para periodos más largos de transporte o de espera, la muestra deberá tomarse con algún medio de transporte, como Stuart (torulines con medio de transporte). - La muestra no debe refrigerarse. - Es preferible que la muestra la tome un otorrino con instrumental adecuado. b.- Cultivo nasal para el estudio de portadores de Staphylococcus aureus: - Se realiza utilizando una tórula estéril la cual debe humedecerse en suero fisiológico estéril. - Ésta se introduce y se hace rotar en el vestíbulo de ambas fosas nasales (tabique y cara interna de las aletas nasales). - Introducir la tórula en un tubo estéril. - Rotular inmediatamente con el nombre del paciente, servicio clínico, fecha y tipo de muestra. - Enviar de inmediato al laboratorio y de no ser posible, considerar que el máximo de tiempo de resistencia de los gérmenes a temperatura ambiente es de dos horas. Para periodos más largos de transporte o de espera, la muestra deberá tomarse con algún medio de transporte, como Stuart (torulines con medio de transporte). - La muestra no debe refrigerarse. 11. Secreción ocular: El agente etiológico de enfermedades infecciosas del ojo se aísla con mayor frecuencia en las primeras etapas de la enfermedad, por ello es fundamental una muestra tomada precozmente, en la forma más aséptica posible y sobre todo antes de la administración del antibiótico. No debe tomarse dentro de las cuatro (4) horas de instalado una solución desinfectante u otros medicamentos que puedan contener antibióticos como preservativos. La muestra debe tomarse con la ayuda de otra persona que inmovilice la cabeza del paciente. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 24 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS La secreción conjuntival se toma con tórula, y debe ser dirigida hacia el ángulo interno del ojo, previa separación del párpado inferior del globo ocular con el pulgar de la otra mano. La tórula debe retirarse suavemente para que toda la superficie del algodón quede empapada con la secreción purulenta. El inoculo debe ser abundante. Enviar de inmediato al laboratorio y de no ser posible, considerar que el máximo de tiempo a temperatura ambiente es de dos horas si fuese obtenida en tórula con medio de transporte, de lo contrario debe ser llevada al laboratorio antes de media hora. La muestra no debe refrigerarse. Es preferible que la muestra sea tomada por un medico oftalmólogo con instrumental adecuado. 12. Secreción ótica: Antes de tomar la muestra proveniente del oído externo debe hacerse un aseo cuidadoso de la piel para disminuir las posibilidades de arrastrar gérmenes presentes normalmente en la zona. Si el pus sale al exterior e inunda el pabellón de la oreja, es preferible eliminarlo previamente con un algodón estéril e introducir la tórula en el conducto auditivo externo siguiendo una dirección ligeramente oblicua de atrás-adelante y de abajo-arriba. En caso de perforación del tímpano, la muestra debe ser tomada por un Otorrino con el material estéril adecuado. Enviar de inmediato al laboratorio y de no ser posible, considerar que el máximo de tiempo a temperatura ambiente es de dos horas. Para periodos más largos de transporte o de espera, la muestra deberá tomarse con algún medio de transporte, como Stuart (torulines con medio de transporte). La muestra no debe refrigerarse. 13. Pus: La toma de muestra deberá realizarse en las mejores condiciones de asepsia posible. En un absceso abierto debe tomarse escasa cantidad de material purulento, se pasa la tórula estéril por las paredes internas del absceso, en la región más alejada de la piel y en ningún caso del centro mismo del absceso (ahí solo se obtiene gérmenes no viables). En un absceso cerrado, al drenarse quirúrgicamente éste, se toma el pus con tórula estéril o jeringa estéril la que debe taparse con un tapón y quedar bien sellada Rotular inmediatamente con el nombre del paciente, procedencia y tipo de muestra. Enviar de inmediato al laboratorio y de no ser posible, considerar que el máximo de tiempo a temperatura ambiente es de dos horas. Para periodos más largos de transporte o de espera, la muestra deberá tomarse con algún medio de transporte, como Stuart (torulines estériles con medio de transporte). La muestra no debe refrigerarse. 14. Heridas y Escaras: Se tomará muestra para cultivo a todo paciente que ingrese con una lesión de piel en que se sospeche infección. Si la evolución de la lesión así lo amerita se tomará otra muestra para cultivo, bajo indicación médica. La muestra será tomada por el profesional de Enfermería o Técnico Paramédico bajo la supervisión del primero. Las lesiones superficiales de la piel son tomadas por remoción de costras y piel que recubre pústulas o vesículas. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 25 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS Limpiar la herida por arrastre mecánico con suero fisiológico, luego frotar con una tórula estéril el centro y los bordes internos de la superficie comprometida dentro de la lesión. En el caso de lesiones más profundas (escaras, quemaduras) se debe limpiar la superficie dañada con suero fisiológico estéril removiendo la escara. Tomar la muestra con tórula estéril de la parte más profunda de la herida. En un absceso abierto debe tomarse escasa cantidad de material purulento, si el contenido del absceso es muy fluido se extrae con jeringa, asépticamente. Se recomienda tomar de las paredes internas del absceso, en la región más alejada de la piel, pero no el centro del mismo. Rotular la muestra con el nombre completo del paciente, la procedencia y el tipo de muestra. Enviar de inmediato al laboratorio y de no ser posible, considerar que el máximo de tiempo a temperatura ambiente es de dos horas. Para periodos más largos de transporte o de espera, la muestra deberá tomarse con medio de transporte, como el medio Stuart. (torulines estériles con medio de transporte). La muestra no debe refrigerarse. 15. Raspado de Piel ( estudio de hongos de la piel ): - Para examen directo y cultivo de hongos solicitar la toma de muestra al Tecnólogo Médico de la sección de Microbiología en horario hábil. - Lo ideal es que la muestra sea tomada antes de iniciar tratamiento con antibióticos y/o antimicóticos. Si es un control y el paciente usó tratamiento local (crema), debe dejar pasar por lo menos 10 días sin aplicar la crema. Si el tratamiento fue oral (tabletas), lo ideal es dejar pasar por lo menos 30 días sin tomar el medicamento - Idealmente el paciente no debe bañarse al menos 12 hrs. antes del examen y debe suspender por 7 días el uso de productos de perfumería (colonia, talco, crema, etc.) si es que la muestra que se va a tomar es de piel. - Si la muestra a tomar es de pelo y cuero cabelludo, no se debe lavar el pelo al menos durante los 4 días previos al examen. - Si la muestra a tomar es de uñas, el paciente no se debe cortar las uñas ni usar esmalte durante los 7 días previos al examen. a.-Raspado de piel para estudio de pitiriasis versicolor: Se debe raspar superficialmente con bisturí la zona de las lesiones (manchas pequeñas hipopigmentadas o híper-pigmentadas), luego se pega la cinta de scotch en la piel, se presiona con el dedo esta cinta y luego se retira para aplicarla sobre un portaobjeto (se toman 3 muestras por paciente). b.- Raspado de piel para estudio de dermatofitos: Se obtiene por raspado con bisturí desde los bordes activos de las lesiones (placas). Para esto se tracciona la piel y se raspa de los bordes rojizos y generalmente solevantados de las placas. El material recolectado debe depositarse en un frasco o placa estéril. c.- Pelo y escamas de cuero cabelludo: Se raspa con bisturí el cuero cabelludo de las lesiones, y el material recolectado se deposita en un frasco estéril, luego con una pinza depilatoria estéril se extrae el pelo de raíz, se corta una porción de 2 cm (desde la raíz) y se deposita en el frasco. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 26 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS d.- Escamas de uñas: La muestra se obtiene raspando con bisturí (con el filo hacia arriba) por debajo de la uña. Si la uña está muy pegada a la piel y no hay detritus que raspar, entonces se raspa por encima de la uña hasta llegar al lecho ungueal. Nota: cuando a un paciente se le extrae una uña, se debe mandar la uña al laboratorio en un frasco estéril y además se debe pasar una tórula por el lecho ungueal y también mandar ésta para cultivo. e.- Lesiones de mucosas, heridas sin secreción y otras lesiones que no permiten raspar: Impregnar tórulas con suero fisiológico estéril y luego tomar la muestra de las superficies comprometidas. 16.-Micosis pulmonar: Es preferible tomar la muestra por aspiración o escobillaje endo-bronquial. En caso de no ser posible se usarán muestras de expectoración, la que será recogida en envases estériles, en ayuna y después que el paciente se haya efectuado un cuidadoso lavado bucal. 17.-Meningitis micótica: Se debe obtener de 2 a 3 ml de líquido cefalorraquídeo en condiciones de asepsia. 18.-Enteritis candidiácica: Se debe tomar una muestra de deposición la que debe ser recolectada en un frasco estéril. 19.-Otras muestras: Líquidos tisulares provenientes de cavidades, secreción vaginal, orina, etc., deben aspirarse y colocarse en tubos estériles. También se pueden tomar utilizando tórulas impregnadas en la secreción. 20.-Coprocultivo corriente: La muestra de deposición debe recolectarse antes de iniciar el tratamiento con antibióticos y lo más precozmente en la etapa aguda de la enfermedad. Las entero-bacterias patógenas disminuyen rápidamente su viabilidad al salir del intestino debido al cambio de temperatura y pH. Para evitar la pérdida de las bacterias por este problema, las muestras deben ser colocadas inmediatamente en un medio de transporte, siendo el elegido en este caso el medio Cary y Blair. Se deben tomar dos (2) muestras por paciente provenientes de evacuaciones diferentes (ver anexo 4). Las muestras de deposición pueden obtenerse de dos formas distintas : a.- Deposición recién emitida: El paciente debe emitir la deposición en un recipiente muy limpio, sin que se contamine con orina, desde el cual se recolecta, con la misma tórula del tubo para coprocultivo una fracción de deposición que muestre mayor alteración (sangre, pus, mucosidad). Si la deposición es sólida, tomar una cantidad de 1 a 2 gr. y si es liquida 3 a 4 cc, los que se introducen con la tórula en el tubo, sumergiéndolas en el gel de transporte. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 27 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS b.- Tórula rectal: Esta técnica es para ser utilizada especialmente en el niño menor. Si se va a obtener la muestra por este procedimiento, la tórula debe humedecerse previamente con el medio de transporte Cary y Blair (gel) y luego introducirla por el ano aproximadamente 2 cm. y simultáneamente hacerla girar suavemente. Luego la tórula con la muestra así tomada se introduce en el tubo y se sumerge en el gel de transporte. En las muestras deben incluirse los trozos de epitelio o mucus con sangre. Una vez tomada la muestra y puesta en el gel de transporte, se deben rotular con el nombre completo del paciente, la procedencia y numero de la muestra (I ó II) y enviar al laboratorio lo antes posible. De no ser posible lo anterior, la muestra se puede mantener a temperatura ambiente y sin sembrar por lo menos 24 horas. Es importante que se consigne en la orden del examen el diagnostico presuntivo del enfermo. La muestra no debe refrigerase. c.- Coprocultivo para búsqueda de Vibrio: En caso de sospecha de cólera, lo fundamental es indicar en la orden del examen el diagnóstico presuntivo o de lo contrario avisar directamente al Tecnólogo Médico de la sección de Bacteriología para que la muestra sea sembrada en los medios especiales para tal efecto. La muestra en este caso se debe tomar igual que en el caso del coprocultivo corriente, pero solo una muestra. También es posible recolectar la muestra de deposición en un frasco limpio si el traslado al laboratorio no demora más de dos (2) horas. 21.- Secreción vaginal: La paciente no debe haber tomado antibióticos o utilizado medicación vaginal en los 14 días previos a la toma de muestra. Se debe dejar constancia en la orden, si la paciente estaba menstruando cuando se tomó la muestra, porque ésta puede producir un olor desagradable al adicionar el reactivo de KOH (test falso positivo). La iluminación debe ser adecuada, de tal forma de tener buena visión del cuello uterino. La muestra se toma con una tórula estéril previo uso de especulo vaginal sin lubricante, pero si se requiere efecto lubricante, el especulo solo puede ser humedecido con suero fisiológico tibio, ya que la mayoría de los lubricantes usuales son tóxicos para las bacterias. Luego se introduce la tórula en el canal endo-cervical y se rota en todos sentidos. Se aconseja mantener la tórula en el endocervix por algunos segundos a objeto de favorecer la absorción de microorganismos. A continuación, (solo si está pedida la investigación de trichomonas) con una sonda y jeringa se introduce en la vagina suero fisiológico estéril (el que es entregado por el laboratorio) y después de unos segundos se extrae y se vacía en el mismo tubo del suero fisiológico. Rotular cada tubo con el nombre completo de la paciente, procedencia y tipo de muestra. En la orden del examen especificar el tipo de cultivo que se requiere, como por ejemplo: cultivo corriente, hongos, gonococo, etc. La muestra no debe refrigerarse y debe ser enviada al laboratorio antes de los 30 minutos. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 28 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS NOTA: Si la toma de muestra está orientada a la investigación de gonococo, la muestra debe ser enviada inmediatamente al laboratorio para ser sembrada en un medio especial, ya que esta bacteria es muy lábil al medio ambiente. La misma precaución debe tenerse cuando se trata del estudio de trichomonas. 22.- Secreción uretral: La muestra uretral debe tomarse no antes de una hora desde la última micción de orina. En la mujer se debe presionar la uretra hacia el orificio para extraer el exudado (el operador debe usar guantes estériles). Se usa una tórula estéril con medio de transporte Stuart para la obtención de las muestras. En el hombre se recoge directamente la secreción purulenta con una tórula estéril (fina). Si no hay descarga uretral aparente, se retrae el prepucio, se limpia el meato urinario con gasa estéril y se presiona el conducto uretral con un movimiento desde atrás hacia el glande, luego se procede a recoger con una tórula estéril la secreción. Si no hubiera secreción, se debe introducir una tórula muy fina unos 2 cm. aproximadamente por la uretra y rotar en forma suave. Rotular la muestra con el nombre completo del paciente, procedencia y tipo de muestra. Y en la orden del examen especificar el tipo de cultivo que se requiere, como por ejemplo: cultivo corriente, hongos, gonococo, etc. La muestra no debe refrigerarse y debe ser enviada al laboratorio antes de 30 min. NOTA: Si la toma de muestra está orientada a la investigación de gonococo, la muestra debe ser enviada inmediatamente al laboratorio para ser sembrada en un medio especial, ya que esta bacteria es muy lábil al medio ambiente. Si la intención es el investigar trichomonas (en el hombre), se debe tomar una orina de 1er chorro en un tubo estéril y debe ser enviado inmediatamente al laboratorio. 23.- Muestra ano rectal: Este tipo de muestra debe tomarse en todos los pacientes en que se sospeche diseminación hematógena gonocócica, en homosexuales y en mujeres. Se ha comprobado que alrededor del 10 % de los casos de gonorrea en mujeres, se pesquisan solamente en la muestra de este origen, sobre todo cuando ha habido tratamiento antibiótico previo. Para tomar esta muestra, se introduce la tórula en el canal anal aproximadamente 2 cm. y se rota.- Si la tórula sale contaminada con deposición, se descarta y se toma una nueva muestra. Rotular la muestra con el nombre completo del paciente, procedencia y tipo de muestra También se debe especificar el tipo de cultivo que se está solicitando, por ejemplo: cultivo de gonococo La muestra no debe refrigerarse y debe ser enviada al laboratorio antes de 30 min. 24.- Espermiograma: Para este examen se debe solicitar la fecha de toma de muestra y las indicaciones directamente al tecnólogo médico de la sección de Bacteriología (ver anexo 5) MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 29 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 25.- Leucocitos fecales: Muestra: Con un palito tomar una porción de la deposición (la de peor aspecto), depositarla en un frasco pequeño que esté limpio y seco (frasco entregado por el laboratorio). Enviar al laboratorio lo antes posible. Colocar todos los datos del paciente en el frasco. 26.- Rotavirus y Adenovirus: Muestra: La muestra de deposición debe ser colectada desde el pañal o desde el recipiente en que se evacuó la deposición y debe ser colocada en un frasco limpio y seco (frasco entregado por el laboratorio). No se deben agregar preservantes ni detergentes. Enviar al laboratorio lo antes posible. Se recomienda mantener y transportar las muestras refrigeradas (2º C a 8 º C). 27.- Eosinófilos nasales: Muestra: La toma de muestra se realiza utilizando 2 tórulas estériles y 2 portaobjetos. Se introduce una tórula en una fosa nasal, en dirección paralela al piso de ésta, se frota suave dando un giro para que la tórula se empape con la secreción nasal. Luego se retira y se frota sobre un portaobjeto de manera de hacer un extendido. Con la otra tórula se debe realizar el mismo procedimiento pero en la otra fosa nasal. Rotular los portaobjetos con el nombre del paciente e identificando la muestra que corresponde a la fosa izquierda y derecha. 28.- Sangre Total (Suero) para V.D.R.L. :(Tubo mediano c/tapa color rojo y/o amarillo) Muestra: Para su obtención se debe tomar entre 4 y 5 ml. de sangre, para un tubo plástico sin anticoagulante. Retirar la aguja y dejar escurrir la sangre por las paredes internas del tubo, sin producir espuma ni adicionar la que hay en la jeringa, tapar, no agitar y dejar en posición vertical hasta que coagule. La observación de esta metódica garantiza que se evitará la hemólisis. La lipemia interfiere en el test. Valores de Referencia, Tipo de Muestra y Tiempo de respuesta. Ver anexo 2. 29.- Exámenes derivados para estudio Bacteriológico: Para este tipo de prestaciones se debe solicitar instrucciones y en algunos casos formularios especiales en la secretaria del laboratorio. 30.- Hisopado Nasofaríngeo - Aspirado Nasofaríngeo: Este tipo de muestra se utiliza para realizar estudios de inmunofluorescencia para la detección de virus respiratorios y Bordetella pertussis. La muestra debe ser tomada por profesionales entrenados (Enfermera o Matrona). Todo el material a utilizar en el procedimiento debe estar estéril de un solo uso. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 30 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS a.- Hisopado Nasofaríngeo para virus respiratorios: Se rechazarán todas aquellas muestras con leche, medicamentos oleosos o pigmentados por interferir en la técnica de inmunofluorescencia (IF). Por ser la IF una técnica cara y laboriosa, esta muestra debe tomarse solo en aquellos pacientes adultos o niños, hospitalizados, con diagnóstico clínico de IRA cuya evolución no supere los 5 días del inicio del cuadro clínico (no se puede tomar en pacientes crónicos). Es necesario que la Enfermera encargada de la toma de muestra se coordine con el área de recepción del laboratorio para la entrega de la solución de buffer y el hisopo nasofaríngeo. Procedimiento: Abrir el sobre que contiene el hisopo. Medir la cantidad de hisopo que se va a introducir en la fosa nasal, midiendo desde la aleta nasal hasta el lóbulo de la oreja. Insertar el hisopo hasta el punto calculado anteriormente y rotar. Introducir el hisopo en el tubo con buffer y quebrar la varilla, cerrar. Rotular el tubo con el nombre completo del paciente y procedencia. Enviar rápidamente al laboratorio en baño de hielo o envuelto en una unidad refrigerante. En caso de IRA Grave, la muestra se debe acompañar del formulario especial “Notificación de IRA Grave”. Las muestras deben ser tomadas antes de las 9:00 a.m., de tal manera que lleguen temprano al laboratorio para ser procesadas durante el día. Durante la campaña de invierno el laboratorio evaluará la posibilidad de realizar la técnica de inmunofluorescencia durante los fines de semana. b.- Aspirado Nasofaríngeo para Bordetella pertussis: El paciente debe estar con un ayuno mínimo de 6 horas antes de la toma de muestra. A la muestra de aspirado nasofaríngeo, no se le debe agregar buffer y debe ser transportada inmediatamente al laboratorio a temperatura ambiente. Nota: Lo ideal es que la muestra sea tomada temprano en la mañana 10. Registros: - Sistema Informático Hospital de Los Andes - Sistema Informático Laboratorio Clínico Hospital de los Andes MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 31 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 11. Indicadores de medición definidos en su aplicación: Título Descripción Racionalidad FICHA INDICADORES CLINICOS APL1.2 Manual de Toma de Muestra : Laboratorio Clínico Muestras coaguladas control TACO. y La activación de la cascada de coagulación durante la toma de muestra, la inhabilita para su procesamiento. Este indicador refleja la calidad del proceso de toma de muestra para este examen. Solo muestras tomadas en el Cae. Numerador Número de muestras coaguladas de exámenes para control de TACO recibidas desde CAE. Denominador Número total de muestras recibidas Fuente de datos Registro manual de procesamiento las muestras. Periodicidad Mensual Umbrales / Umbral de cumplimiento: Criterios de Optimo: 0.00 – 3.00 % interpretación de Aceptable: 3.10 – 5.00 % resultados Crítico. 5.10 – 100.00 % Áreas de Toma de Muestra Consultorio de Especialidades (CAE) aplicación Responsables Jefe de Laboratorio Clínico. Referencias GUIA CLINICA DE TRATAMIENTO ANTICOAGULANTE ORAL Bibliográficas 200.72.142.194/chp/.../GuíaClínicaTratamientoAnticoagulanteOral.p.. Título Descripción Racionalidad Hemocultivos contaminados Pediatría y Este indicador mide la proporción de cultivos contaminados, error atribuible a un problema en la técnica de toma de muestra del examen. Fuente de datos: registro manual de procesamiento las muestras. Numerador Denominador Fuente de datos Periodicidad Umbrales / Criterios de interpretación de resultados Numero de muestras contaminadas Numero total de muestras Registro manual de procesamiento las muestras. Trimestral Umbral de cumplimiento: Optimo: 0 – 3.00 % Aceptable: 3.10 – 4.00 % Crítico: 4.10 – 100.00 % Áreas de Servicio Clínico: Pediatría. aplicación Responsables Jefe de Laboratorio Clínico. Referencias PROCEDIMIENTOS EN MICROBIOLOGÍA CLÍNICA Bibliográficas www.seimc.org/documentos/protocolos/.../cap3a.htm - España MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 32 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS Título Descripción Racionalidad Errores pre-analíticos Servicio de Urgencia y Este indicador mide el conjunto de errores pre-analíticos detectados a las muestras provenientes del servicio de urgencia, recibidas en todas las secciones del laboratorio, que incluyen principalmente errores de rotulación, muestras coaguladas, escasas o sobre nivel. Numerador Número de muestras con errores pre-analíticos Denominador Número total de muestras Fuente de datos Registro en Formulario de rechazo de muestras. Periodicidad Mensual Umbrales / Umbral de cumplimiento: Criterios de Optimo: 0.00 – 3.00 % interpretación de Aceptable: 3.10 – 5.00 % resultados Crítico. 5.10 – 100.00 % Áreas de Servicio de Urgencia. aplicación Responsables Jefe de Laboratorio Clínico. Referencias Evaluación de incidencias pre-analíticas en un laboratorio Bibliográficas www.sediglac.org/congresos/14congreso-10/.../MoralElicheA_art.pdf Título Descripción Racionalidad Hemocultivos contaminados UPC y Este indicador mide la proporción de cultivos contaminados, error atribuible a un problema en la técnica de toma de muestra del examen. Numerador Denominador Fuente de datos Periodicidad Umbrales / Criterios de interpretación de resultados Número de muestras contaminadas Número total de muestras Registro manual de procesamiento las muestras. Trimestral Umbral de cumplimiento: Optimo: 0.00 – 3.00 % Aceptable: 3.10 – 4.00 % Crítico. 4.10 – 100.00 % Áreas de Servicio Clínico: Unidad de pacientes críticos (UPC) aplicación Responsables Jefe de Laboratorio Clínico. Referencias PROCEDIMIENTOS EN MICROBIOLOGÍA CLÍNICA Bibliográficas www.seimc.org/documentos/protocolos/.../cap3a.htm - España MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 33 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS Título Descripción Racionalidad Hemocultivos contaminados Medicina y Este indicador mide la proporción de cultivos contaminados, error atribuible a un problema en la técnica de toma de muestra del examen. Numerador Denominador Fuente de datos Periodicidad Umbrales / Criterios de interpretación de resultados Número de muestras contaminadas en el servicio de medicina Número total de muestras tomadas en el servicio de medicina Registro manual de procesamiento las muestras. Trimestral Umbral de cumplimiento: Optimo: 0.00 – 3.00 % Aceptable: 3.10 – 4.00 % Crítico. 4.10 – 100.00 % Áreas de Servicio Clínico: Medicina aplicación Responsables Jefe de Laboratorio Clínico. Referencias PROCEDIMIENTOS EN MICROBIOLOGÍA CLÍNICA Bibliográficas www.seimc.org/documentos/protocolos/.../cap3a.htm - España Título Descripción Racionalidad Urocultivos contaminados UPC y Este indicador mide la proporción de cultivos contaminados, error atribuible a un problema en la técnica de toma de muestra del examen. Numerador Denominador Fuente de datos Periodicidad Umbrales / Criterios de interpretación de resultados Número de muestras contaminadas Número total de muestras Registro manual de procesamiento las muestras. Trimestral Umbral de cumplimiento: Optimo: 0.00 – 3.00 % Aceptable: 3.10 – 4.00 % Crítico. 4.10 – 100.00 % Áreas de Servicio Clínico: Unidad de Pacientes Críticos (UPC) aplicación Responsables Jefe de Laboratorio Clínico. Anexos Formulario de registro de avisos de resultados críticos de exámenes. Referencias Rol del Laboratorio de Microbiología en el Control de infecciones. Bibliográficas www.sochinf.cl/...microbiologia.../Rol_del_Laboratorio_de_microbi... MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 34 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS Título Descripción Racionalidad Urocultivos contaminados Medicina y Este indicador mide la proporción de cultivos contaminados, error atribuible a un problema en la técnica de toma de muestra del examen. Numerador Denominador Fuente de datos Periodicidad Umbrales / Criterios de interpretación de resultados Número de muestras contaminadas Número total de muestras Registro manual de procesamiento las muestras Trimestral Umbral de cumplimiento: Optimo: 0.00 – 3.00 % Aceptable: 3.10 – 4.00 % Crítico. 4.10 – 100.00 % Áreas de Servicio Clínico: Medicina aplicación Responsables Jefe de Laboratorio Clínico. Referencias Rol del Laboratorio de Microbiología en el Control de infecciones. Bibliográficas www.sochinf.cl/...microbiologia.../Rol_del_Laboratorio_de_microbi.. Título Descripción Racionalidad Urocultivos contaminados Pediatría y Este indicador mide la proporción de cultivos contaminados, error atribuible a un problema en la técnica de toma de muestra del examen. Numerador Denominador Fuente de datos Periodicidad Umbrales / Criterios de interpretación de resultados Número de muestras contaminadas Número total de muestras Registro manual de procesamiento las muestras. Trimestral Umbral de cumplimiento: Optimo: 0.00 – 3.00 % Aceptable: 3.10 – 4.00 % Crítico. 4.10 – 100.00 % Áreas de Servicio Clínico: Pediatría. aplicación Responsables Jefe de Laboratorio Clínico. Referencias Rol del Laboratorio de Microbiología en el Control de infecciones. Bibliográficas www.sochinf.cl/...microbiologia.../Rol_del_Laboratorio_de_microbi.. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 35 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 12. Referencias bibliográficas: 1. Manual de Toma de Muestra, Edición 01, 10 enero 2006. 2. Obtención de muestras sanguíneas de calidad analítica, mejoría continua de la etapa preanalítica, Luis Morán Villatoro, 2001. 3. Pre-analítica, María Dolores Vivancos Sanz Licenciada en Ciencias Químicas, especialidad Bioquímica. 1996. 4. Apuntes curso de “Infecciones Intrahospitalarias para profesionales de Laboratorio Clínico”, U de Valparaíso, Octubre 2002. 5. Reglamento de Laboratorios, Decreto Nº 20, Ministerio de Salud, Subsecretaria de Salud Pública, 28 Abril del 2012. Chile. 13. Responsable de calidad: El profesional encargado de la toma de muestras será el responsable de la difusión de esta norma y de velar por su cumplimiento, así como de proponer las actualizaciones y modificaciones pertinentes. 14. Distribución: Servicios Clínicos Servicio de Urgencia Toma de Muestra CAE Toma de muestra Consultorios Enfermera IAAS Oficina de Calidad y Seguridad del Paciente 15. Anexos Anexo 1: Listado de Exámenes de Urgencia ...................................................................................... Anexo 2: Listado de Exámenes de Laboratorio: ................................................................................. Anexo 3: Observaciones de los Valores de referencia ....................................................................... Anexo 4: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen Coprocultivo. ............................ Anexo 5: Instructivo de preparación y toma de muestra del examen Espermiograma ........................ Anexo 6: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen Baciloscopia de expectoración . Anexo 7: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen de sangre oculta en deposición (test de weber) ................................................................................................................................... Anexo 8: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen parasitológico seriado de deposiciones. ..................................................................................................................................56 Anexo 9: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen test de Graham .....................57 Anexo 10: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen Clearence de Creatinina (orina 24 horas) ...............................................................................................................................58 Anexo 11: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen Test de Tolerancia a la Glucosa 59 MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 36 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS Anexo 12: Instructivo de Preparación y toma de muestra del Análisis de Hormonas Reproductivas60 Anexo 13: Instructivo de Preparación y Toma de muestra del examen orina completa ...................61 Anexo 14: Instructivo de Preparación y Toma de muestra de análisis de sangre sin Triglicéridos ...62 Anexo 15: Instructivo de Preparación y Toma de Muestra de análisis de sangre con Triglicéridos..63 Anexo 16: Instructivo de Preparación y Toma de Muestra del examen Urocultivo en mujeres: .......64 Anexo 17: Instructivo de Preparación y Toma de Muestra del examen Urocultivo en hombres: ......65 Anexo 18: Exámenes derivados: .....................................................................................................66 Anexo 19: Código de barras: ...........................................................................................................68 Anexo 20: Solicitud de examen de paciente hospitalizado ..............................................................69 Anexo 21: Almacenamiento transporte y observaciones para toma de muestra: .............................70 Anexo 22: Instructivo de Preparación y Toma de muestra del examen de Rotavirus y adenovirus……………………………………………………………………………………………………72 Anexo 23: Instructivo de Preparación y Toma de muestra del examen de Leucocitos fecales……………………………………………………………………………………………………...…73 Anexo 24: Instructivo de Preparación y Toma de muestra del examen Clostridium Difficile……………………………………………………………………………………………………..…74 Anexo 25: Instructivo de Preparación y Toma de muestra de Baciloscopías en orina…75 MARIA ALEJANDRA CARVALLO GONZALEZ DIRECTORA HOSPITAL“SAN JUAN DE DIOS” DE LOS ANDES MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 37 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS Revisión Registro de Modificaciones Nº Detalle Creación 01 Memorando que dispone (si corresponde) Nº Fecha 10. Enero. 2006 Revisión y actualización 24. Febrero 2010 Revisión y actualización 28. Julio. 2010 02 03 Revisión y actualización 04.Enero 2012 Revisión y actualización 05 Mayo 2014 04 05 MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 38 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 1: Listado de Exámenes de Urgencia Amilasa Orina Completa y Urocultivo Lipasa (para pacientes con sonda) LCR: Químico, cultivo y citológico Flujo vaginal (solo en agresión sexual – urgencia mater) Test de Clamidia (solo en agresión sexual – urgencia mater) Cultivo de secreciones y coprocultivos Proteína C Reactiva Perfil hepático: GOT, GPT, Bilirrubina y Fosfatasas alcalinas. Enzimas cardíacas: LDH Total, CK –total, CK- MB, Troponina. Citológico y Citoquímico de Líquidos biológicos pH y Gases en sangre arterial y venosa Electrolitos plasmáticos Creatinina Calcio Hematocrito Recuento glóbulos blancos Histograma y se guarda frotis para hemograma (PED-MED-PENSIO) Tiempo de Protrombina Glucosa TTPK Bilirrubina de Recién nacidos Urea Cuerpos Cetónicos y Amonio Colinesterasa plasmática Dímero D Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 39 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 MANUAL LABORATORIO CLINICO TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 2: Listado de Exámenes de Laboratorio: Código Examen Sección 0305008 Antiestreptolisina O Valor de Unidad referencia Hombres Mujeres Tipo de muestra Tiempo de respuesta hábil Tiempo de respuesta Urgencia 48 hrs --- Química Hasta 200 UI/ml STOT Química 0.0 - 4.0 ng/ml STOT (Látex) 0305070 Antígeno prostático --- especifico 0306056 Acarotest Parasito Negativo --- Raspado 72 hrs --- 0302005 Acido úrico Química 3.5 - 7.2 mg/dl STOT 48 hrs --- 48 hrs 2.6 - 6.0 0309004 Acido Úrico, Química 150 - 990 mg/24 hrs OR24 Química 50 - 100 ug/ml STOT uricosuria 0302035V Acido valproico --- plasmático 0302008 Amilasa Química 69 - 110 U/L STOT 48 hrs 3 hrs 0309006 Amilasuria Química 10 - 481 U/L ORIN 48 hrs 3 hrs 0302010 Amonio Química 11 - 32 ug/dl SHEP en 48 hrs 3 hrs Niños 15 -56 hielo Química Negativo SEDT 48 hrs 3 hrs Química 3.8 - 5.0 g/dl STOT 48 hrs 3 hrs 0309028 Albuminuria 24 hrs Química 10 - 100 mg/24 hrs OR24 48 hrs 3 hrs 0309028 Química Negativo mg/dl ORIN 48 hrs 3 hrs Química Ver UI/ml STOT 72 hrs --- --- Anticuerpos anti VIH 0302060A Albúmina Albuminuria aislada 0305003 Alfa fetopoteinas observacio nes (1) 0306002 Baciloscopia TBC Negativo --- DESG 72 hrs --- Química Negativo --- ORIN 48 hrs --- Bilirrubina total Química 0.3 - 1.0 mg/dl STOT 48 hrs 3 hrs Bilirrubina directa Química Hasta 0.3 mg/dl STOT 48 hrs 3 hrs Bilirrubina indirecta Química 0.3 - 0.8 mg/dl STOT 48 hrs 3 hrs 0308001 Benedict cuerpos reductores 0302012 Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 40 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 MANUAL LABORATORIO CLINICO TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 0302012 Bilirrubina RN Química Varia con mg/dl STOT 48 hrs 3 hrs las horas de nacido 0302015 Calcio Química 8.4 - 10.1 mg/dl STOT 48 hrs 3 hrs 0309008 Calciuria Química 42 - 353 mg/24 hrs OR24 48 hrs --- Química 8.0 - 12.0 ug/ml STOT Química 250 - 450 ug/dl STOT 48 hrs --- 150 - 300 ug/dl 25 - 55 % Química Negativo mg/dl STOT 48 hrs 3 hrs UMT Negativo --- STOT 48 hrs --- 0302032C Cloro Química 95 - 105 mEq/l STOT 48 hrs 3 hrs 0309012C Cloro orina Química 55 - 125 mEq/L ORIN 48 hrs --- Química 110 - 250 mEq/24 OR24 48 hrs --- 0302035C Carbamazepina --- plasmática Capacidad de fijación del Fierro 0301029 T.I.B.C. U.I.B.C. % saturación 0302001 Cetonemia 0306061 Chagas, anticuerpos anti aislada 0309012C Cloro urinario hrs 8006060 Coeficiente Química Hasta 30 mg/g ORIN 48 hrs --- Microalbuminuria/ creatininuria 0302067 Colesterol Total Química Hasta 200 mg/dl STOT 48 hrs --- 0302068 Colesterol HDL Química 45 - 65 mg/dl STOT 48 hrs --- 35 - 55 --- Colesterol LDL Química Hasta 150 mg/dl STOT 48 hrs --- 0302021 Colinesterasa Química 4620–1500 U/L STOT 48 hrs 3 hrs --- DEPO/Cary 72 – 96 hrs --- DEPO/Cary 48 - 72 --- Blair hrs 3930-0800 0306007 Coprocultivo + Bacterio Negativo antibiograma 0306007 Coprocultivo para Vibrio Blair Bacterio Negativo --- Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 41 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 MANUAL LABORATORIO CLINICO TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 0302001 Cuerpos cetónicos, Química Negativo STOT 48 hrs 3 hrs Química Negativo ORIN 48 hrs --- Química 0.8 - 1.3 mg/dl STOT 48 hrs 3 hrs g/24 hrs OR24 48 hrs --- ml/min. STOT y 48 hrs --- cetonemia 0309011 Cuerpos cetónicos, cetonuria 0302023 Creatinina 0.6 - 1.0 0309010 Creatininuria Química 0.6 - 2.5 0.6 - 1.5 0302024 Clearence de Química 61 - 166 creatinina OR24 0301014 Coombs directo UMT Negativo --- STOT 48 hrs 0301050 Coombs indirecto UMT Negativo --- STOT 0302026 CK-Total Química < 190 U/L STOT 48 hrs 3 hrs U/L STOT 48 hrs 3 hrs 48 hrs --- 72 - 96 hrs --- < 167 0302025 CK-MB Química Hasta 25 o 6% del CK Total --- Cristales en Química Negativo --- Cultivo corriente + Bacterio Negativo --- liquido articular 0306008 antibiograma 0306008+ Fluido biológico Cultivo LCR Bacterio Negativo --- LCR 72 - 96 hrs --- 0306017 Cultivo de Hongos Bacterio Negativo --- Raspado 30 días --- 0306021 Cultivo de Bacterio Negativo --- LCR 72 - 96 hrs --- 3 hrs 0306021 meningococo 0301027 Dímero D Hemato Corte 500 ug/ml SCIT 48 hrs 0306004 Directo de Bacterio Negativo --- Raspado 72 hrs Hongos 0302032 Electrolitos plasmáticos --- de piel Química Ver Sodio, Potasio y Cloro mEq/L STOT 48 hrs 3 hrs Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 42 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 MANUAL LABORATORIO CLINICO TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 0309012 Electrolitos Química urinarios Ver Sodio, mEq/24 Potasio y hrs OR24 48 hrs --- Liquido 3 días --- Cloro 0308029 Espermiograma Bacterio Ver --- observacio seminal nes (2) 0303030 Estradiol Química Ver pg./ml STOT 72 hrs --- --- Sec. 48 hrs --- observacio nes (3) 0306005 Eosinofilos Bacterio Negativo nasales 0302035F Fenitoína Nasal Química 10 - 20 ug./ml STOT 72 hrs --- Química 15 - 40 ug./ml STOT 72 hrs --- Química Hasta 20 UI/ml STOT 48 hrs --- plasmática 0302035P Fenobarbital plasmático 0305019 Factor reumatoideo 0301028 Fierro Sérico Química 60 - 160 ug/dl STOT 48 hrs --- 0301021 Fibrinógeno Hemato 200 - 400 mg/dl SCIT 48 hrs --- 0301026 Ferritina Química Ver ng/ml STOT 48 hrs --- U/L STOT 48 hrs 3 hrs mg/dl STOT 48 hrs --- observacio nes (4) 0302040 Fosfatasas Química alcalinas 0302042 Fósforo 50 - 136 Niños 35-300 Química 2.7 - 4.5 Niños 4.5-5.5 0309015 Fosforo urinario Química 0.4 - 1.3 g/24 hrs OR24 48 hrs --- 0303015 FSH (hormona Química Ver mUI/ml STOT 72 hrs --- U/L STOT 48 hrs --- --- SHEP en 48 hrs 3 hrs folículo observacio estimulante) 0302045 Gama-GT nes (5) Química 8 - 61 5 - 36 0302046 Gases en sangre Química Ver observacio nes (6) hielo Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 43 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 MANUAL LABORATORIO CLINICO TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS --- Globulinas Química 1.9 - 3.5 g/dl STOT 48 hrs 3 hrs 0302047 Glucosa Química 55 - 105 mg/dl SFLO 48 hrs 3 hrs 0302047 Glucosa RN Química 40 - 60 mg/dl SHEP 48 hrs 3 hrs 0302048 Glucosa, test de Química Ver mg/dl SFLO 48 hrs --- tolerancia observacio nes (7) 0302048 Glucosa post Química 90 - 120 mg/dl SFLO 48 hrs --- 0309016 Glucosuria 24 hrs Química 0.1 - 0.5 g/24 hrs OR24 48 hrs --- 0303014 Gonadotrofina Química mUI/ml STOT 48 hrs --- prandial corionica Ver observacion es (8) 0301034 Grupo y Rh 8006101 Hemocultivo + UMT --- --- STOT 48 hrs 3 hrs Bacterio Negativo --- Sangre 6 días --- Hemato 40 - 52 % SEDT 48 hrs 3 hrs g/dl SEDT 48 hrs 3 hrs --- SEDT 48 hrs --- DEPO 48 hrs --- % SHEP 72 hrs --- antibiograma 0301036 Hematocrito 37 - 47 0301038 Hemoglobina Hemato 13.5 - 18.0 12.0 - 16.0 0301045 Hemograma-VHS Hemato Ver observacio nes (9) 0308004 Hemorragias Química Negativo Química 4.8 - 6.0 ocultas (Weber) 0301041 Hemoglobina glicosilada 8006117 Histograma 0303017 Insulina ayunas 0303017 Insulina post carga Isoinmunizacion 0301050 Hemato Ver recuento de eritrocitos, recuento de leucocitos, recuento de plaquetas, hematocrito y hemoglobina Química 1.9 a 23.0 --- SEDT 48 hrs 3 hrs uU/ml STOT 72 hrs --- Química Hasta 60.0 uU/ml STOT 72 hrs UMT Negativo --- STOT --- 3 hrs Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 44 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 MANUAL LABORATORIO CLINICO TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 0302030 LDH (deshidrogenasa láctica) Química 105 - 235 U/L STOT 48 hrs 3 hrs mUI/ml STOT 72 hrs --- U/l STOT 48 hrs 3 hrs mEq/L STOT 5 días --- Liquido amniótico 48 hrs --- LCR 48 hrs 3 hrs Liquido pleural 24 hrs 3 hrs Liquido sinovial 48 hrs 3 hrs --- DEPO 48 hrs --- 105 - 230 Niños135-395 0303016 LH (hormona luteinizante) 0302053 Lipasa 0302055 Litio, nivel plasmático Liquido amniótico 8006113 RN 125 - 765 Ver observacio nes (10) Química 0 - 60 Química Química 0.6 - 1.2 Química 8006112 LCR Citológico y Química citoquímico 8006112 0308005 Liquido pleural Química Citológico y citoquímico Liquido sinovial o Química articular Citológico y Citoquímico Leucocitos fecales Bacterio Ver observacio nes (11) Ver observacio nes (12) Ver observacio nes (13) Ver observacio nes (14) Negativo 0309013 Microalbuminuria Química Hasta 30 Mg/24 hs OR24 48 hrs --- 0306036 Monotest Hemato Negativo mg/dl STOT 48 hrs --- 0302057 Nitrógeno ureico Química 7 - 18 mg/dl STOT 48 hrs 3 hrs 0309020 Nitrógeno ureico Química urinario pH deposición Química 7.0 - 20.0 g/24 hrs OR24 48 hrs --- DEPO 48 hrs --- 0306059 Parasitológico Seriado Parasito --- DEPO/PAF 7 días --- 0302034 Perfil Lipídico Química --- STOT 48 hrs ------ 0305031 Proteína C reactiva Química No se observa elementos parasitarios Ver Colesterol total, colesterol HDL, colesterol LDL y triglicéridos 0.00 - 9.00 mg/dl STOT 48 hrs 3 hrs g/dl STOT 48 hrs --- 8006112 0308006 Variable Niños0.0-9.0 0302060P Proteínas totales Química RN 0. -15.0 6.0 - 8.0 Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 45 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 MANUAL LABORATORIO CLINICO TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 0309028 Proteinuria 24 hrs Química 10 - 100 mg/24 hrs OR24 48 hrs 3 hrs 0309029 Proteína de Bence Jones Perfil Hepático Química Negativa --- OR24 48 hrs --- Química Ver Bilirrubina completa, GOT, GPT fosfatasas alcalinas 3.5 - 5.0 --- STOT 48 hrs 3 hrs mEq/L STOT 48 hrs 3 hrs 8006115 0302032P Potasio Química Niños 3.2-5.5 0309012P Potasio orina aislada 0309012P Potasio urinario Química 12 - 62 mEq/L ORIN 48 hrs --- Química 40 - 80 mEq/24 OR24 48 hrs --- hrs 0301027 0303020 Producto de degradación del fibrinógeno FDP Prolactina Hemato Hasta 0.25 Ug/ml SCIT 48 hrs --- Química H 2.2 - 25.0 ng./ml STOT 72 hrs --- Ver observacio nes (15) Negativo ng./ml STOT 72 hrs --- --- STOT --- 3 hrs --- STOT 48 hrs --- Hemato Negativo Ver observacio nes (16) 0 - 100 mm3 SEDT 48 hrs --- Hemato 100 - 400 mm3 SEDT 48 hrs --- Hemato 4.6 - 6.2 mm3 SEDT 48 hrs 3 hrs mm3 SEDT 48 hrs 3 hrs mm3 SEDT 48 hrs 3 hrs M1.9 - 35.0 0303019 Progesterona --- Prueba de compatibilidad Unidad de Sangre Reacciones de aglutinación, pruebas tíficas, Widal Recuento de basófilos Recuento de eosinófilos Recuento de eritrocitos 8006116 0301062 0301063 0301064 0301065 0301067 0301068 0302059 Química UMT Bacterio 4.2 - 5.4 Recuento de leucocitos Hemato 4.000 - Recuento de plaquetas Hemato Recuento de reticulocitos Relación Albúmina/Globulin as Hemato 0.5 - 1.5 % SEDT 48 hrs --- Química 1.9 - 3.5 --- STOT 48 hrs --- 10.000 140.000 450.000 Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 46 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 MANUAL LABORATORIO CLINICO TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 0306070 Rotavirus Bacterio Negativo --- DEPO 48 hrs --- 8006100 Screening metabólico en orina Química Ver test cloruro férrico, test 2,4 dinitrofenilh idrazina 135 - 145 --- ORIN 48hrs --- mEq/L STOT 48 hrs 3 hrs 0309012S Sodio orina aislada Química 20 - 110 mEq/L ORIN 48 hrs --- 0309012S Sodio urinario 80 - 180 mEq/24 OR24 48 hrs --- 0302032S Sodio Química Química hrs Química 30 - 65 U/L STOT 48 hrs 3 hrs Química 15 - 37 U/L STOT 48 hrs 3 hrs 0302027 Transaminasa pirúvica (GPT, ALAT) Transaminasa oxalacética (GOT, ASAT) Troponina Química Hasta 0.01 ug/dl STOT 48 hrs 3 hrs 0306051 Test de Graham Parasito Negativo --- 7 días --- --- Tinción para Cryptosporidium Triglicéridos Parasito Negativo --- Cinta scotch DEPO/PAF 10 días --- Química Hasta 150 mg/dl STOT 48 hrs --- Negativo --- 48 hrs --- 87 - 178 ng/dl ORIN o FLUJO STOT 72 hrs --- 0302063 0302063 0302064 0306004 0303028 Trichomonas Bacterio directo al fresco T3 (triyodotironina) Química 0303027 T4 (tetrayodotironina) 0303026 T4 L (tetrayodotironina libre) 0303024 TSH (hormona tiroestimulante) 0308001 Test de Benedict Química 6.09 -12.23 ug/dl STOT 72 hrs --- Química 0.61 - 1.12 ng/dl STOT 72 hrs --- Química 0.34 - 5.60 uU/ml STOT 72 hrs --- Química Negativo --- DEPO/ORIN 48 hrs --- 8006100 Test 2,4 dinitrofenilhidrazina 0309018 Test cloruro férrico Química Negativo --- ORIN 48 hrs --- Química Negativo --- ORIN 48 hrs --- 0301059 Tiempo de protrombina 0301072 Tiempo de Sangría Hemato 80 - 100 % SCIT 48 hrs 3 hrs Min Corte antebrazo 48 hrs --- Seg SCIT 48 hrs 3 hrs --- Fluido biológico 48 hrs --- UMT Método: IVY : 2 - 9 0301085 Tiempo parcial de Tromboplastina TTPK 0306005 Tinción de Gram Hemato 22.0 - 32.0 Bacterio Negativo Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 47 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 MANUAL LABORATORIO CLINICO TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 0306005 Tinción de Gram en LCR 0306005 Tinción para Campylobacter 0302057 Urea 0306011 Urocultivo Bacterio Negativo --- Bacterio Negativo --- Química 15 - 39 mg/dl Bacterio Negativo --- LCR 3 hrs DEPO/Cary 72 - 96 hrs Blair STOT 48 hrs ORIN 48 - 72 3 hrs --3 hrs --- hrs 0306042 V.D.R.L. Bacterio No --- STOT Reactivo Hasta --- 8 días 0302023ª Velocidad de Filtración Glomerular 0301086 Velocidad de sedimentación VHS Química > 60 ml/min STOT 48 hrs --- Hemato Menor de 10 mm/hr. SEDT 48 hrs --- 0309022 Orina completa ORIN 48 hrs 3 hrs Densidad Química Ver densidad, nitritos, leucócitos, pH, proteinuria aislada, glucosuria aislada, cuerpos cetonicos, urobilinógeno, bilirrubina, hematies. Química 1.001- 1.035 ORIN 48 hrs 3 hrs Nitritos Química Negativo ORIN 48 hrs 3 hrs Leucocitos Química 0 - 10 ORIN 48 hrs 3 hrs pH Química 4.6 - 8.0 ORIN 48 hrs 3 hrs Proteinuria aislada Química Negativa mg/dl ORIN 48 hrs 3 hrs Glucosuria aislada Química Negativo mg/dl ORIN 48 hrs 3 hrs Cuerpos cetonicos Química Negativo ORIN 48 hrs 3 hrs Urobilinogeno Química 0.2 - 1.0 mg/dl ORIN 48 hrs 3 hrs Bilirrubina Química Negativo mg/dl ORIN 48 hrs 3 hrs Hematíes Química 0 - 5 cel/ul ORIN 48 hrs 3 hrs Menor de 30 Cel/ul MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 48 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 3: Observaciones de los Valores de referencia 1.- Alfa fetoproteinas: Varón 0 - 4.0 UI/ml Mujer no embarazada 0 - 4.0 UI/ml Mujer embarazada varía según semana de gestación 2.- Espermiograma (líquido seminal) (OMS): Volumen ≥ 2.0 pH 7.2 - 8.0 Concentración ≥ 20 Concentración Total ≥ 40 Motilidad A ≥ 25 Motilidad A+B ≥ 50 Células redondas ≤5 Vitalidad (vivos) ≥ 75 Normalidad Morfología OMS ≥ 30 Normalidad Morfología Estricta (Kruger) ≥ 14 3.- Estradiol: Varón: Mujer : Pick preovulatorio Fase lutea Fase folicular Menopausia 4.- Ferritina: Hombre 18 a 30 años Hombre 31 a 60 años Mujer pre menopáusica Mujer postmenopáusica 5.- FSH: Varón: Mujer: Pick ovulatorio 1era mitad ciclo folicular 2da mitad ciclo folicular Fase lútea Menopausia ml millones/ml millones % % millones/ml % % formas normales % formas normales menor de 62 pg/ml 93 - 575 43 - 241 18 - 147 menor de 58 18.7 - 323 16.4 - 194 6.9 - 283 14.0 - 233 pg/ml pg/ml pg/ml pg/ml ng/ml ng/ml ng/ml ng/ml 1.7 - 12.0 mUI/ml 6.3 - 24.0 3.9 - 12.0 2.9 - 9.0 1.5 - 7.0 17.0 - 95.0 mUI/ml mUI/ml mUI/ml mUI/ml mUI/ml MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 49 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 6.- Gases en sangre: pH pCO2 pO2 Saturación de oxigeno [ H+ ] Base buffer Bicarbonato estándar Bicarbonato actual CO2 total Exceso de base Venoso 7,31 - 7,42 39 - 55 30 - 50 60 - 85 40 44 - 48 21 - 25 22 - 30 23 - 29 +/- 2,0 Arterial 7,34 - 7,45 32 - 45 mm Hg 75 - 100 mm Hg 95 - 98 % nmol/l mmol/l mmol/l mmol/l 20 - 24 mmol/l mmol/l 7.- Glucosa, curva de tolerancia a la glucosa Basal 55 - 105 A las 2 horas post carga (75 g de glucosa) 90 - 140 mg/dl mg/dl 8.- Gonadotrofina corionica : Varón: menos de 3.0 mUI/ml Mujeres cíclicas menor de 4.0 mUI/ml Mujeres menopáusicas menos de 13.0 mUI/ml Mujeres embarazadas varía según edad gestacional mUI/ml 9.- Hemograma y fórmula leucocitaria: Glóbulos rojos H : 4,6 - 6,2 M : 4,2 - 5,4 millones/mm3 Volumen corpuscular medio ( VCM ) 82 - 98 u3 Hemoglobina corpuscular media ( CHM) 27 - 31 pg Concentración de hemoglobina corpuscular media ( CHCM ) 32 - 36 % Hematocrito H: 40-52 M:37-47 % Hemoglobina H: 13.5-18 M:12-16 g/dl Globulosa blancos 4.000– 10.000 leuc/mm3 Recuento de plaquetas 140.000-440.000 plaq/mm3 % Basófilos Eosinófilos Baciliformes Segmentados Linfócitos Monocitos 0 2 2 50 20 4 - número absoluto 1 4 5 70 35 8 % % % % % % 0 - 100 /mm3 100 - 400 /mm3 100 - 500 /mm3 2.500 - 7.000/mm3 1.000 - 3.500/mm3 200 - 800 /mm3 MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 50 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 10.- LH: Varón Mujer: Pick ovulatorio 1era mitad ciclo folicular 2da mitad ciclo folicular: Fase lútea Menopáusica 1.1 - 7.0 mUI/ml 9.6 1.5 2.0 0.2 8.0 mUI/ml mUI/ml mUI/ml mUI/ml mUI/ml - 80.0 8.0 8.0 6.5 33.0 11.- Líquido amniótico: Aspecto Ácido úrico Creatinina pH Proteínas totales Sodio Células anaranjadas Urea < 28 semanas Claro 3,7 +/- 0,96 0,8 - 1,1 7,12 - 7,38 0,6 +/- 0,24 sodio del suero 0 18 +/- 5,9 parto Ligeramente opalescente 9,9 +/- 2,23 mg/dl 1,8 - 4,0 mg/dl 6,91 - 7,13 0,26 +/- 0,19 g/dl 7 - 10 meq/l inferior al del suero > 20 % 30,3 +/- 11,4 mg/dl 12.- Líquido cefalorraquídeo: Aspecto Claro Pandy Negativo Proteínas totales 15 - 45 mg/dl Glucosa 45 - 75 mg/dl Cloruros 120 - 130 meq/l Recuento de células 0 - 8 células/ mm3 ; todas Mononucleares (100 %) 13.- Líquido pleural: Aspecto Color Coágulo de fibrina Recuento de células Neutrófilos Proteínas Glucosa 14.- Líquido sinovial: Aspecto Coágulo de fibrina Viscosidad Recuento de leucocitos Neutrófilos Glucosa Cristales Ligeramente opalescente Amarillo, ligeramente xantocrómico Ausente 60 células/mm3 < 25 % 1 - 2 g/dl 10 mg menos que el valor sanguíneo Claro, transparente Ausente Elevada < 200 células/mm3 < 25 % 10 mg menos que el valor sanguíneo Ausentes MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 51 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS 15.- Progesterona: Varón: Mujer: Pick ovulatorio Fase folicular Fase lútea Menopáusica 0.11 - 0.56 ng/ml 0.12 - 6.22 0.10 - 0.54 1.5 - 20.0 menos de 0.41 ng/ml ng/ml ng/ml ng/ml 16.- Reacciones de aglutinación: Eberth H ( typhi H) < 1 : 80 Eberth O ( typhi O) < 1 : 80 Paratyphi A < 1 : 80 Paratyphi B < 1 : 80 Brucelosis < 1 : 80 Weil- Félix Diferencia de 4 títulos entre el período agudo y convaleciente MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 52 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 4: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen Coprocultivo. 1. Se deben tomar dos muestras de deposición en tiempos diferentes. 2. En adultos y niños mayores: El paciente debe emitir la deposición en un recipiente muy limpio desde el cual se recolecta la fracción de la deposición que muestre mayor alteración (sangre pus y mucosidad). Esto se debe realizar con la tórula de algodón que se le entregó, tomando una pequeña porción de la muestra y luego la tórula debe ser enterrada en el gel del tubo. 3. En niños menores: la muestra puede ser recolectada desde el pañal o también se puede humedecer la tórula en el gel e introducirla cuidadosamente en el ano aproximadamente dos centímetros, haciéndola girar suavemente. Una vez obtenida la muestra ésta debe ser colocada en el tubo enterrando la tórula con la muestra en el gel. 4. Conservación y Traslado de muestras: Mantener las muestras a temperatura ambiente y al juntar las dos, traerlas al laboratorio. 5. Plazo de entrega del examen: 72 a 96 horas. NOTA: SIGA BIEN LAS INSTRUCCIONES Y EVITE ENSUCIAR LAS PAREDES DEL TUBO CON LA MUESTRA. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 53 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 5: Instructivo de preparación y toma de muestra del examen Espermiograma 1. Se requiere de una muestra de semen y el paciente debe tener entre 3-5 días de abstinencia sexual. 2. El paciente se debe tomar la muestra en su casa. La muestra se semen se obtiene por masturbación, se deposita toda la muestra en el frasco y se tapa bien; no debe usar condones ni otros recipientes para recolectar la muestra. 3. Conservación y traslado de muestra: El frasco y la orden del examen deben llegar al laboratorio antes de transcurrida 1 hora desde que se tomó la muestra. Transportar la muestra a temperatura del cuerpo (envolverlo en un pañuelo o un calcetín y ponerlo en un bolsillo cerca del cuerpo). 4. En la orden del examen se debe anotar la hora en que se tomó la muestra y si la muestra es completa o perdió parte de la misma. También debe anotar los días de abstinencia que tiene. 5. Si tiene dudas o no entiende estas instrucciones consulte en el laboratorio. 6. Plazo de entrega del examen: 3 días. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 54 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 6: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen Baciloscopia de expectoración Este examen se realiza para investigar la presencia de la bacteria que causa la tuberculosis, por lo que se busca en muestras de desgarro (expectoración o flema) que provengan de la zona interna de la vía respiratoria cercana al pulmón, por lo que se debe evitar la saliva y el moco nasofaríngeo. La muestra adecuada es MUCOPURULENTA. Ud. dispone de 2 CAJAS NEGRAS para depositar sus muestras, cada una de ellas tiene adherido a su pared un rotulo con sus datos personales. - Se requieren 2 MUESTRAS. - La cantidad óptima es 2 ml aproximadamente. - La primera muestra puede obtenerse en forma espontánea luego de un episodio de tos en cualquier momento del día. - La segunda muestra se obtiene al día siguiente, al despertar. - Las muestras se toman de la siguiente forma: 1. Enjuague la boca con agua. Abra la caja negra y acérquela a su boca. 2. Tome aire profundamente y reténgalo por unos momentos, luego expúlselo con fuerza para forzar la tos productiva. 3. Escupa la muestra al interior del envase cuidando de no ensuciar el envase por fuera. 4. Tape la caja cuidadosamente y limpie con toalla de papel la parte de afuera si fuese necesario. Lave sus manos con agua y jabón. 5. Conservación y traslado de muestra: Guarde las muestras hasta el momento de ser llevadas al laboratorio. 6. Déjelas en lugar fresco donde no les llegue luz, de preferencia refrigeradas sobretodo en época de verano. 7. Transporte las muestras CAJAS NEGRAS, dentro de la bolsa de plástico, sin envolverlas, para que pueda verse la posición de la caja que no debe voltearse para evitar derrames. 8. Lleve las muestras al laboratorio antes de las 10:00 hrs del día de la segunda toma de muestra. 9. Entregue las muestras en el mesón de recepción de muestras junto a la orden médica “formulario de investigación bacteriológica” con todos los datos. 10. Plazo de entrega del examen: El resultado de la Baciloscopía está dentro de las próximas 72 hrs. hábiles, se retira en secretaría para pacientes ambulatorios o es enviada a su lugar de procedencia vía estafeta. 11. Toda muestra de Baciloscopía es enviada para Cultivo y el informe bacteriológico final o resultado de este cultivo se obtiene a los 60 días. - Si Ud. no entiende o tiene dudas para tomar la muestra, consulte al personal del laboratorio. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 55 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 7: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen de sangre oculta en deposición (test de weber) 1. El paciente no debe realizar régimen alimenticio antes de la toma de muestra. 2. El examen no se puede realizar: sufriendo un cuadro diarreico, y tampoco si se trata de una mujer en periodo menstrual. 3. Se le entregará el material de toma de muestra que consiste en un frasco limpio y seco. 4. Con una paleta de madera tomar una pequeña parte de la deposición (del tamaño de una uva), y ponerla dentro del frasco. 5. Tapar bien el frasco. 6. Conservación y traslado de muestra: Se deben entregar la muestra en el laboratorio con su respectiva orden médica y trasportada a temperatura ambiente, las muestras se reciben de lunes a viernes en horario hábil. 7. Si tiene dudas o no entiende las instrucciones, consulte en el laboratorio. 8. Plazo de entrega del examen: 48 horas. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 56 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 8: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen parasitológico seriado de deposiciones. 1. Se deben tomar en total tres (3) muestras de deposiciones día por medio (un día sí, un día no). 2. Defecar en bacinica limpia y seca, sin mezclar con orina (orinar antes), sirven las deposiciones de cualquier hora del día. 3. En niños que usan pañal tomar la muestra desde ahí. 4. Con una paleta de madera tome una pequeña parte de la deposición (como el tamaño de una NUEZ PEQUEÑA), ponerlo dentro del frasco que se le entregó y mezclarlo bien con el líquido que contiene hasta que quede homogéneo. 5. Tapar bien el frasco y al completar las tres muestras, traerlo al laboratorio junto a la orden del examen. 6. El volumen máximo de las 3 deposiciones no debe sobrepasar el líquido fijador. 7. Si observa gusanos en las deposiciones póngalos cuidadosamente en otro frasco limpio con agua de la llave y llévelos al laboratorio. 8. Si tiene dudas o no entiende las instrucciones, consulte en el laboratorio. 9. Conservación y traslado de muestra: Transportar a temperatura ambiente evitando derrames. 10. Plazo de entrega del examen: 7 días. NOTA: NO INGERIR EL CONTENIDO DEL FRASCO MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 57 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 9: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen test de Graham 1. 2. 3. 4. 5. Usted recibirá un paquete con cinco placas para realizar el examen. Deberá tomar una muestra diaria, en días seguidos, hasta completar las cinco (5) Cada día se debe utilizar una paca nueva. Tomar la muestra en la mañana al levantarse, antes de realizar cualquier actividad. No se debe aplicar pomadas, talcos ni otras sustancias en la región perianal durante los días en que se tomen las muestras. 6. Idealmente otra persona debe tomar la muestra (si el examen se solicitó para un adulto). 7. Despegar la cinta de la placa y con el lado adhesivo realizar varias aplicaciones alrededor del ano, en forma radiada. 8. Adherir la cinta nuevamente a la placa, alisándola con suavidad y cuidando que quede paralela al borde del portaobjetos. 9. Lavarse las manos cuidadosamente con agua jabón y utilizar escobilla para uñas. 10. Conservación y traslado de muestra: Depositar las 5 placas dentro de una envoltura de papel protegiéndola de la exposición de la luz y llevar al laboratorio a temperatura ambiente. 11. Plazo de entrega del examen: Este examen posee un tiempo de respuesta hábil de 7 días. NOTA: SERAN DEPOSICIONES. RECHAZADAS TODAS LAS MUESTRAS QUE CONTENGAN MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 58 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 10: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen Clearence de Creatinina (orina 24 horas) 1. Se recolecta orina de 24 horas; y conjuntamente se toma una muestra de sangre en ayunas. 2. Se recomienda no ingerir diuréticos, te café u otros alimentos que estimulen la diuresis, mientras dure la recolección de la orina de 24 horas. Tampoco se debe beber más agua de la que consume ya que provocará que se alteren sus resultados. 3. El paciente debe vaciar completamente la vejiga a una hora determinada (por ejemplo a las 7:45) luego esta orina se elimina para que así la recolección de la orina de 24 horas sea la indicada. 4. Se debe recolectar la totalidad de orina que presente durante las 24 horas (en el ejemplo: a partir de las 7:45 a.m. hasta las 7:45 a.m. del día siguiente, incluyendo la orina obtenida en ese momento). 5. La recolección se hace en un recipiente limpio que se debe dejar en un lugar fresco ya que la orina a temperatura ambiente cambia el pH; provocando que la muestra se contamine con bacterias. 6. Al terminar la recolección, se toma una muestra de sangre para creatinina. 7. En la orden del examen se debe incluir: peso, talla y edad. 8. El recipiente que se utilice debe venir rotulado desde su hogar. 9. Conservación y traslado de muestra: Una vez recolectada la orina llevarla inmediatamente al laboratorio a temperatura ambiente. 10. Plazo de entrega del examen: Este examen posee un tiempo de respuesta hábil de 48 horas. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 59 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 11: Instructivo de Preparación y toma de muestra del examen Test de Tolerancia a la Glucosa 1. Tener un ayuno mínimo de 12 horas. 2. Retirar la solución de glucosa en la farmacia del hospital antes de llegar al laboratorio al momento de la toma de muestra. 3. Después de tomar la muestra de SANGRE en ayunas, se administrará una solución de glucosa oral, usualmente la dosis en adultos es de 75 g 4. Entre la PRIMERA Y SEGUNDA MUESTRA el paciente debe permanecer en REPOSO (se recomienda sentado) por un periodo de 2 horas entre dichas muestras. Además de no debe consumir nada después de la administración de la solución de glucosa. 5. VENIR ACOMPAÑADO ya que pueden presentarse vomito o diarrea después del test. 6. TRAER UN LIMON desde su hogar. 7. Plazo de entrega del examen: Este examen posee un tiempo de respuesta hábil de 48 horas. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 60 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 12: Instructivo de Preparación y toma de muestra del Análisis de Hormonas Reproductivas Si se le solicitaron cualquiera de los siguientes análisis: ESTRADIOL, FSH, LH, PROLACTINA BASAL, usted deberá: 1. Concurrir al laboratorio en ayunas de 10 horas (solo podrá tomar agua y lavarse los dientes). 2. No deberá tener relaciones sexuales 24 horas antes de la extracción 3. No deberá bañarse la mañana del análisis para evitar cualquier estimulación mamaria por agua caliente o masaje. 4. Evitar cualquier situación de stress. 5. Su médico le indicará en que día de su ciclo menstrual debe tomarse la muestra. 6. Plazo de entrega del examen: Este examen posee un tiempo de respuesta hábil de 48 horas. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 61 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 13: Instructivo de Preparación y Toma de muestra del examen orina completa 1. Seleccionar un envase apropiado, este debe ser limpio y seco, lo ideal es un frasco plástico que puede solicitar en el laboratorio. 2. Es recomendable la primera orina de la mañana ya que se encuentra más concentrada; previo a ello es necesario un aseo prolijo ya que un mal aseo arroja resultados erróneos. 3. Conservación y traslado de muestra: No deben transcurrir más de dos horas de tomada la muestra para su procesamiento. De no ser posible el envío inmediato, refrigerar la muestra hasta el momento del envío de la misma. Las muestras dejadas a temperatura ambiente comienzan a descomponerse con rapidez. 4. Plazo de entrega del examen: Este examen posee un tiempo de respuesta hábil de 48 horas. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 62 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 14: Instructivo de Preparación y Toma de muestra de análisis de sangre sin Triglicéridos 1. Concurrir al Laboratorio, manteniendo un período de ayuno de 8 a 10 horas. Cenar de manera habitual y contar las horas a partir de finalizada la cena. 2. No se recomiendan ayunos mayores a 14 horas. 3. No fumar, ni beber café, té o mate durante el período del ayuno. 4. Si lo desea puede beber agua 5. Plazo de entrega del examen: Este examen posee un tiempo de respuesta hábil de 48 horas. Por favor, cumpla con estas instrucciones. LA CALIDAD es nuestro objetivo. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 63 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 15: Instructivo de Preparación y Toma de Muestra de análisis de sangre con Triglicéridos 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. Concurrir al laboratorio, manteniendo un período de ayuno de 12 a 14 horas. Cenar de manera habitual y contar las horas a partir de finalizada la cena. Abstenerse de beber alcohol 3 días antes del examen. No se recomiendan ayunos mayores a 14 horas. No fumar, ni beber café, té o mate durante el período del ayuno Si lo desea puede beber agua. Plazo de entrega del examen: Este examen posee un tiempo de respuesta hábil de 48 horas Por favor, cumpla con estas instrucciones. LA CALIDAD es nuestro objetivo. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 64 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 16: Instructivo de Preparación y Toma de Muestra del examen Urocultivo en mujeres: 1. Debe ser la primera orina de la mañana. 2. Previo a tomar la muestra debe hacerse un lavado prolijo de la zona genital, por lo tanto debe tener a la mano lo siguiente: a) jabón; b) agua hervida a temperatura ambiente; c) gasa estéril o un paño recién lavado; y d) el frasco o tubo estéril para tomar la muestra. 3. Proceda primero a lavarse las manos y luego siéntese en el inodoro, lo más hacia atrás que pueda. Separe los labios genitales con una mano y mantenga los pliegues separados y proceda a asearse toda la zona genital con el jabón. Enjuague con abundante agua y luego seque bien con gasa estéril o con una toalla de papel. 4. Proceda a recoger la orina, destapando previamente el frasco SÓLO EN EL MOMENTO DE LA MICCIÓN y sin tocar con los dedos su interior, coloque la tapa con el lado plano hacia abajo. No toque el interior del recipiente o de la tapa; en caso de que este sea un frasco o de lo contario al ser un tubo estéril con algodón este debe permanecer en la mano ya desinfectada. Empiece a orinar en el recipiente estéril y recoja en el frasco o tubo sólo la muestra del chorro del medio es decir, NO DEBE RECOGER NI LA PRIMERA, NI LA ÚLTIMA PARTE DEL CHORRO DE ORINA. 5. Conservación y traslado de muestra: Tape muy bien el frasco o tubo y rotúlelo con su nombre. Tráigalo al laboratorio lo más pronto posible, en un recipiente con hielo, cuidando de que no se derrame el contenido. 6. Plazo de entrega del examen: Este examen posee un tiempo de respuesta de 48 a 72 horas. NOTA: Éste es un método común utilizado para la recolección de orina. Se puede presentar un resultado erróneo en el cultivo de orina como consecuencia del uso reciente de antibióticos. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 65 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 17: Instructivo de Preparación y Toma de Muestra del examen Urocultivo en hombres: 1. Debe ser la primera orina de la mañana. 2. Previo a tomar la muestra debe hacerse un lavado prolijo de la zona genital, por lo tanto debe tener a la mano lo siguiente: a) jabón; b) agua hervida a temperatura ambiente; c) gasa estéril o un paño recién lavado; y d) el frasco o tubo estéril para tomar la muestra. 3. Lavarse con jabón primero las manos y luego la cabeza del pene empezando por la abertura uretral y continúe en dirección a usted, previa retracción del prepucio, si no está circuncidado. Luego enjuagar bien con agua previamente hervida (a temperatura ambiente) y secar con gasa estéril o con un paño recién lavado. 4. Destape el frasco o el tubo de vidrio estéril sólo en el momento de la micción y sin tocar con los dedos su parte interna, coloque la tapa con el lado plano hacia abajo y en caso de ser la tapa un algodón sostenerlo en la mano ya desinfectada. Comience a orinar en el recipiente y recoja en el frasco sólo la muestra del chorro del medio, es decir, NO DEBE RECOGER NI LA PRIMERA NI LA ÚLTIMA PARTE DEL CHORRO DE ORINA. 5. Conservación y traslado de muestra: Tapar bien el frasco, rotularlo con su nombre y traerlo al laboratorio lo más pronto posible, en un recipiente con hielo y cuidando de que no se derrame el contenido. 6. Plazo de entrega del examen: Este examen posee un tiempo de respuesta de 48 a 72 horas. NOTA: Éste es un método común utilizado para la recolección de orina. Se puede presentar un resultado erróneo en el cultivo de orina como consecuencia del uso reciente de antibióticos. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 66 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 18: Exámenes derivados: BARNAFI Y KRAUSE DIAGNOSTICA Tipo de Muestra Testosterona Libre y Total STOT D.H.E.A STOT Cortisol urinario OR24 Hormona del crecimiento STOT Cortisol plasmático, ciclo circadiano (8.00 y 18.00 hrs.) STOT 17 Hidroxicorticoesteroides en orina OR24 Anticuerpos anti CMV ( tipo Ig G ) STOT Anticuerpos contra antígenos extractables del núcleo ( ENA) STOT Anticuerpos anti musculo liso STOT Anticuerpos anti mitocondriales STOT Electroforesis de proteínas STOT Serología para Toxoplasmosis STOT Serología para Hidatidosis STOT Determinación de complemento CH 50 STOT Epstein Barr, anticuerpos anti STOT INSTITUTO DE SALUD PUBLICA DE CHILE Inmunofluorescencia directa para Chlamydia Tipo de Muestra Secreción Serología para Amebiasis STOT Serología para Triquinosis STOT Serología para Cisticercosis STOT Serología para Toxocariosis STOT Serología para Fasciolasis STOT F.T.A. A.B.S. ( Inmunofluorescencia para sífilis) STOT Determinación de adenosin-deaminasa Suero/Liquido biológico M.H.A. - T.P. STOT Anticuerpos para: STOT MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 67 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS Polio Echo Coxsackie Rubéola Varicela Zoster Herpes Simplex Parotiditis Mycoplasma pneumoniae T.O.R.C.H. STOT MANUAL LABORATORIO CLINICO TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 19: Código de barras: Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 68 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 MANUAL LABORATORIO CLINICO TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 20: Solicitud de examen de paciente hospitalizado Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 69 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 70 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 MANUAL LABORATORIO CLINICO TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 21: Almacenamiento transporte y observaciones para toma de muestra: Exámenes Bioquímicos Examen Ácido úrico, Albúmina Bili. Directa,Bili. Indirecta, Bili. Total Calcio, Creatinina Electrolitos,Fosfatasa alcalina, Fosforo, GPT, GOT, GGT, LDH Proteínas totales, Transferrina, Ferremia, Urea Colesterol Total Triglicéridos pH y Gases sanguíneos Amonio Glicemia Condiciones del paciente Ayuno relativo para evitar lipemia Colesterol HDL Colesterol LDL Tipo de tubo Sangre venosa Tapa roja STOT Conservación, traslado y Observaciones Almacenar a Tº ambiente hasta su procesamiento. Trasladar calor Ayuno estricto de 8 a 12 horas. Ninguna 1era muestra en ayuno Curva de tolerancia estricto de 8 a la glucosa de 2 a 12 horas. puntos. 2da muestra a los 120 Curva de insulina de minutos 2 puntos después de una carga de 75 grs. de glucosa por vía oral. Amilasa, Calcio, CK, CKMB, Troponina Muestra aisladas del Sangre venosa Tapa roja STOT Mantener a Tº ambiente hasta su procesamiento. Sangre arterial o venosa según sea el caso Jeringa con baño de heparina y tapa. Sangre Venosa Tapa gris SFLO La jeringa DEBE transportarse con tapa y en hielo. Traslado inmediato al Laboratorio. La muestra NO debe tener burbujas Mantener a Tº ambiente hasta su procesamiento Ayuno Sangre relativo de 2 venosa a 4 horas Ayuno Sangre estricto de 8 venosa a 12 horas Tapa roja STOT Tapa roja STOT Tapa roja STOT Mantener la muestra a Tº ambiente hasta su procesamiento. Mantener la muestra a Tº ambiente hasta su procesamiento. Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 71 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 MANUAL LABORATORIO CLINICO TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS Hemoglobina glicosilada Cetonemia Ayuno Sangre relativo de 2 venosa a 4 horas Ninguna Sangre venosa Tapa lila SEDTA Tapa roja STOT Mantener la muestra a Tº ambiente hasta su procesamiento. Mantener la muestra a Tº ambiente hasta su procesamiento. Exámenes Endocrinológicos TSH, T3, T4 libre, T4, estradiol. Prolactina, progesterona, FSH, LH, insulina. Ayuno Sangre relativo de 2 a venosa 4 horas Exámenes Inmunológicos Proteína C Reactiva Ayuno Sangre Factor Reumatoídeo relativo de 2 a venosa 4 horas Niveles Plasmáticos Niveles Plasmáticos de: Ácido Valproico Carbamazepina Fenitoína Fenobarbital Ayuno Sangre relativo de 2 a Venosa 4 horas No tomar la dosis de medicamento previa a la toma de muestra. Exámenes Hematológicos Hemograma Ayuno Sangre Hemoglobina relativo de 2 venosa Hematocrito a 4 horas. Rec. Eritrocitos Rec. Leucócitos Rec. Plaquetas. Rec. Neutrófilos. Rec. Eosinófilos. Rec. Reticulocitos. Velocidad de Ayuno Sangre sedimentación estricto de 8 venosa (VHS) a 12 horas. Exámenes de Coagulación Tiempo de Ayuno relativo Sangre Tapa roja STOT Mantener la muestra a Tº ambiente hasta su procesamiento. Tapa roja STOT Mantener la muestra a Tº ambiente hasta su procesamiento. Tubo tapa roja. STOT Mantener la muestra a Tº ambiente hasta su procesamiento. Anotar en la Orden de Examen la dosis y horario de ingesta del medicamento. Tapa lila SEDTA Mantener a Tº ambiente hasta su procesamiento Tapa lila SEDTA Mantener a Tº ambiente hasta su procesamiento Tapa celeste Mantener tapado a Tº Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 72 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 MANUAL LABORATORIO CLINICO TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS protrombina. de 2 a 4 horas TTPK (tiempo parcial de protrombina activada) Fibrinógeno Dímero D Tiempo de sangría No ingerir Ác, Acetilsalicílico (aspirina) u otro fármaco que contenga antiagregantes plaquetarios al menos 5 días antes del examen. venosa Sangre venosa Exámenes de Marcadores Tumorales Alfa feto proteínas Ninguna Sangre B-HCG venosa. PSA total Exámenes en Secreciones Citoquímicos en: Ninguna Líquido Pleural Líquido Ascítico Líquido Articular Liquido Ninguna Cefalorraquídeo Exámenes Serológicos en Sangre VDRL Ayuno relativo de 2 a 4 horas SCIT ambiente hasta su procesamiento. (No más de 2 horas) Procedimiento realizado directamente al paciente por el Tecnólogo Médico o Técnico paramédico de Laboratorio. Tapa roja. STOT Mantener la muestra a Tº ambiente hasta su procesamiento. Líquido que correspo nda. Liquido cefaloraquideo Tubos de vidrio estéril con heparina. Mantener la muestra a Tº ambiente hasta su procesamiento. Tubo de vidrio estéril sin anticoagulante Mantener la muestra a Tº ambiente hasta su procesamiento. Sangre venosa Tapa roja STOT Mantener la muestra a Tº ambiente hasta su procesamiento. Exámenes Químicos en Orina Amilasuria Microalbuminuria Uricosuria Albuminuria de 24 horas. Ingesta de líquidos normal, NO requiere ayuno Orina de 24 horas. Envase de Mantener la muestra en 2000 cc, limpio lugar fresco. y seco Medir diuresis y especificarla en la Orden de Examen. Cetonuria Albuminuria simple Glucosuria Ninguna Orina recién emitida Envase de Mantener la muestra en orina plástico refrigeración hasta su con tapa rosca procesamiento roja Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 73 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 MANUAL LABORATORIO CLINICO TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS Exámenes de Orina Orina Completa Aseo Genital previo a la recolección de la muestra. 1era orina de la mañana, 2do chorro. Envase de Mantener la muestra orina plástico refrigerada hasta su con tapa rosca procesamiento. roja. Glucosuria de 24 hrs. Calciuria, N. Uréico Electrólitos Clearence de Creatinina Ingerir líquidos en forma normal. Orina 24 horas Botellas o envases de 2000 cc de capacidad. No requiere ayuno Medir diuresis y anotar estos datos en la Orden de Examen. Para clearence agregar peso y talla. Mantener la muestra en lugar fresco. Exámenes en muestras de Deposición Hemorragias Ocultas Toxinas A y B de Clostridium Difficile Sin preparación previa especial Sin preparación previa especial Deposición Frasco plástico, limpio, seco y con tapa. Deposición Frasco plástico liquida o estéril. alterada Mantener en lugar fresco hasta su procesamiento. Enviar inmediatamente al Laboratorio a temperatura ambiente. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 74 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 22 INSTRUCTIVO DE PREPARACIÓN Y TOMA DE MUESTRA DEL EXAMEN DE ROTAVIRUS Y ADENOVIRUS 1. Las muestras se deben recolectar apenas aparezcan los primeros síntomas (el peak viral se produce a los 3-5 días) 2. Evitar tomar muestras después de 8 días aparecidos los síntomas, ya que pueden conducir a falsos negativos 3. Se le entregara el material de toma de muestra que consiste en un frasco limpio y seco. 4. Con una paleta de madera tomar una pequeña parte de la deposición (del tamaño de una uva), y ponerla dentro del frasco. 5. Tapar bien el frasco. 6. Conservación y traslado de muestra: Se deben entregar la muestra en el laboratorio con su respectiva orden médica y trasportada a temperatura ambiente, las muestras se reciben de lunes a viernes en horario hábil para consultorios y las 24 horas para servicios clínicos. 7. Si tiene dudas o no entiende las instrucciones, consulte en el laboratorio. 8. Plazo de entrega del examen: 48 horas. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 75 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 23 INSTRUCTIVO DE PREPARACIÓN Y TOMA DE MUESTRA DEL EXAMEN DE LEUCOCITOS FECALES 1. Obtener la muestra de Deposición por eliminación espontánea. 2. Depositar la muestra en un frasco limpio. 3. La muestra debe ser trasladada al laboratorio, antes de dos horas de su obtención. 4. Cantidad mínima requerida, ½ cucharadita de té. Recolección de muestra de deposición de pañal (Sacar con espátula de madera, la deposición más superficial y abundante que contenga el pañal. 5. Se debe obtener la muestra, es deseable que sea recién emitida para evitar que ésta sea absorbida por el pañal. 6. Conservación y traslado de muestra: Sacar mínimo un tercio de la espátula y depositarla en frasco entregado por el laboratorio. 7. Taparlo con sus dos tapas y meterlo en una bolsa plástica, agregar en ésta cubos de hielo. 8. La muestra debe ser trasladada al Laboratorio de antes de dos horas de su obtención. 9. Plazo de entrega del examen: 48 horas. MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 76 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 24 INSTRUCTIVO DE PREPARACIÓN Y TOMA DE MUESTRA DEL EXAMEN DE CLOSTRIDIUM DIFFICILE 1. El paciente debe estar hospitalizado y presentar uno o más de los siguientes factores de riesgo: - Uso de antibióticos previo (hasta 2 meses atrás) especialmente betalactámicos, clindamicina o quinolonas. - Hospitalización en los dos últimos 2 meses. - Edad mayor de 65 años. - Contacto previo con pacientes CD (+) - Antecedente de infección por CD. 2. Sólo se debe solicitar análisis de toxina en deposiciones a pacientes sintomáticos y sin otra causa evidente que explique el cuadro diarreico. Deposiciones diarreicas de Pacientes con al menos 2 deposiciones diarias en las últimas 48 hrs. 3. La orden médica debe ser hecha en formulario especial, “Formulario Clínico/Epidemiológico para estudio de toxinas A y B de Clostridium difficile”. No solicitar estudio de deposiciones como control post tratamiento. 4. Conservación y traslado de muestra: La muestra será una deposición fresca en frasco estéril, proporcionado por laboratorio. _ La muestra debe ser enviada de forma inmediata al Laboratorio, etiquetada y en doble envase. Si no es posible procesar de inmediato se puede conservar: 4-8ºC, durante 2 Horas, -20º C, hasta 48 hrs, -70ºC, por periodos prolongados 5. Si el resultado de este examen es positivo, el Laboratorio informara de inmediato al servicio clínico. 6. Se puede tomar una segunda muestra en caso de resultado negativo y fuerte sospecha Clínica. 7. La muestra debe ser tomada antes del inicio del tratamiento antibiótico. 8. Plazo de entrega del examen: 2 horas MANUAL LABORATORIO CLINICO Código : LABMTM2006-1 Edición :05 Fecha : 05.MAY.2014 Página 77 de 77 Vigencia : 2014 - 2017 TOMA DE MUESTRAS BIOLOGICAS ANEXO 25 INSTRUCTIVO DE PREPARACIÓN Y TOMA DE MUESTRA DEL EXAMEN DE BACILOSCOPIA EN ORINA 1. Retirar el material necesario desde la Recepción del Laboratorio Clínico, para ello presentar la orden médica respectiva. 2. Indicaciones: 3. Realizar aseo genital prolijo. 4. Utilizar la primera orina de la mañana. 5. Conservación y traslado de muestra: El primer día: eliminar el primer chorro y recibir en frasco estéril, el segundo chorro. Refrigerar la muestra y trasladar antes de 2 horas al Laboratorio Clínico. 6. Repetir este procedimiento los días 2, 3, 4, 5 y 6, en forma sucesiva. 7. Cada muestra debe tomarse en un frasco diferente y ser llevada DIARIAMENTE al Laboratorio Clínico. 8. La cantidad de muestra debe ser de aproximadamente 100 a 200 ml no se recomienda un volumen inferior a éste. 9. Plazo de entrega del examen: Baciloscopías: 72 horas hábiles y Cultivo: 60 días. 10. NO OLVIDE ROTULAR CADA FRASCO CON SU NOMBRE Y FECHA DE LA MUESTRA
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