Side 1 af 13 Eksamen: Bioinformatik – It og Sundhed 27 Jan 2011 kl 9-13 Navn: Studie nummer: Dette eksamenssæt vil også kunne ses som en pdf fil nederst på kursus-hjemmesiden udfor den sidste dag d. 27 Jan (Navn: Eksamen_27-1-2011.pdf) Kursus-hjemmeside: http://www.cbs.dtu.dk/courses/bioinformatics_it_and_health/2010/programme.php Eksamenssættet består af 6 hoved-emner 1 – 6 og til hvert emne er der en række spørgsmål som du skal svare på. Ialt er der 13 sider, hvoraf de to sidste er Appendix 1 og 2. Spørgsmålene du skal svare på står med kursiv Hvis du ikke har tilstrækkelig plads på disse sider så svar på et andet stykke papir, men husk at gengive hvilket spørgsmål du svarer på ved at skrive 1b hvis du svarer på spørgsmål b i opgave 1. Læs opgaverne omhyggeligt inden du begynder. Emner (bedømmelses-vægt i procent) Opgave 1: DNA og RNA (15%) Opgave 2: Aminosyrer (20%) Opgave 3: Uniprot (20%) Opgave 4: Sekvens alignment (20 %) Opgave 5: SNP ‐ Single Nucleotide polymorphism (15%) Opgave 6: PDB – 3D‐struktur og homologi modellering (10%) Vi vil logge jeres internet under denne eksamen og alt kommunikation med andre personer via mail, tlf og lignende er diskvalificerende. Side 2 af 13 Opgave 1: DNA og RNA (15%) a) Hvad kaldes den proces, hvor DNA oversættes til messenger RNA (DNA -> mRNA)? b) Hvad kaldes den proces, hvor messenger RNA oversættes til protein (mRNA -> protein)? c) Hvad er 1-bogstavs koderne for kerne-baserne (nukleotiderne) i DNA? d) Hvilke af disse kerne-baser danner hydrogen-bindinger til hinanden (kaldet base parring på engelsk)? Herunder er et stykke genomisk DNA (+ string) kaldet ‘gene1’ med læseretning fra venstre mod højre gene1: TTGATTGCAA e) Er den korrekt læseretningen for DNA fra 3’ mod 5’ enden eller omvendt dvs fra 5’ mod 3’ enden ? f) Der fines 3 stop codons: TAA, TAG og TGA. Benyt sekvensen herunder (geneA) til at finde alle stop-codons i alle læserammer. Sekvensen er angivet for + stringen, med læseretning fra venstre mod højre. Skriv læseramme efterfulgt af mulige stopcodons. geneA: TTGATTTCAA Side 3 af 13 Opgave 2: Aminosyrer (20%) a) Hvor mange naturligt forekommende aminosyrer findes der? b) En enkelt aminosyre har ikke et chiralt C-alpha atom. Hvad er 1 og 3-bogstavs koderne for denne? Skriv 1 og 3-bogstav koder for aminosyrerne som tilhører de grupper som er listet herunder i spørgsmål c), d) og e) c) Basiske: d) Sure: e) Aromatiske: f) Skriv herunder en korrekt sekvens i FASTA format, med navnet MIN_SEKVENS. Dette korte peptid skal bestå af 5 forskellige aminosyrer som er polære eller hydrophobe – benyt 1-bogstavs koder. g) Tegn et di-peptid, hvor du indikerer sidekæden med ‘R’. Skriv også navn på de 4 backbone atomer. Side 4 af 13 Opgave 3: Uniprot (20%) Benyt “Advanced Search” i Uniprot databasen til at lede efter ‘lysozyme’ hits for organismen Gallus gallus (Chicken). a) Hvor mange “reviewed”(dvs UniProtKB/Swiss‐Prot) hits finder du for ‘lysozyme’ for organismen’Chicken’, hvor lysozyme er en del af protein navnet (protein name). skriv antal hits du ender op med til sidst og evt antal hits (søgeresultater) du får undervejs? b) Angiv “Accession” nummer for et af den/de hits du fandt spørgsmål 3a og skriv, med 1-bogstavs kode og position, de aminosyrer som er del af det aktive site i dette protein? c) Det protein du beskrev i spørgsmål 3b, vil det virke indenfor eller udenfor den celle hvor det bliver lavet. Angiv længden af det modne (English: mature) protein, samt hvor det befinder sig (dvs indenfor eller udenfor cellen). Begrund dine svar. d) For proteinet med accession number P00698 (‘0’ er et nul og ikke et bogstav) er der angivet sekundær strukturen i Uniprot. Kan du udfra denne angive hvilken af de 5 foldklasser (a, b, c, d eller e) proteinet tilhører? a. All‐alpha b. All‐beta c. Alpha+beta d. Alpha/beta e. Få eller ingen sekundær struktur elementer Side 5 af 13 4: Sekvens alignment (20 %) Man har søgt med en protein sekvens mod en stor database af sekvenser vha Blast (i protein mode ‘blastp’) og får 4 forskellige alignments tilbage. Resultaterne fra disse 4 alignments beskrives herunder som Hit 1-4. Normalt benyttes e-værdier (også kaldet e-values eller Expection values) til at udvælge det bedste hit. a) Skriv de 4 hits i en ordnet liste under hinanden, således at det bedste hit står øverst og dårligste hit står nederst. Skriv også hvilke hits du vil betragte som signifikante og hvorfor. Hit 1: e-value = 4e-22 Hit 2: e-value= 0 Hit 3: e-value= 3.2 Hit 4: e-value = 0.01 Side 6 af 13 To protein sekvenser kan alignes såfremt man har en substitutions-matrix og et mål for hvad det koster at lave gaps. Herunder er et alignment, hvor ‘Query’ er en betegnelse for den sekvens man har søgt med, mens ‘Sbjct’ repræsenterer et hit fundet i en sekvens-database. ‘Affine gap-scores’ Når man laver et alignment kan man benytte sig af en simple procedure, hvor alle gaps koster det same eller man kan benytte en procedure med affine gap-scores, som er den måde Blast benytter. Når man anvender affine gap-scores, koster det en pris for at åbne et gap (gap-opening) og en anden pris for de næste gaps (gap-next). ‘Gap-opening’ er altså den pris det koster i en situation hvor man indsætter et gap i et alignment og positionen lige før er ikke et gap. ‘Gap-next’ er den pris det koster i den situation hvor man indsætter et gap i et alignment og positionen lige før er også et gap. Her skal vi benytte denne procedure med affine gap-scores. Gap-opening score: -11 Gap-next score: -1 b) Hvad er alignment scoren for det hypotetiske alignment som er vist. Benyt Blosum62 matrix i Appendix 1 og proceduren som beskrevet ovenfor i ‘Affine gapscores’. Husk at skrive mellem-regninger, ikke kun et tal. pos: Query: Sbjct: Pos: 8 15 P R - - Q C K – S S | | | P R R E R C R Q T S 3 12 c) Der findes overordnet to forskellige typer af alignments. Hvad kaldes den type alignment som er vist i spørgsmål 4b ? Side 7 af 13 d) Herunder er 2 korte peptider Seq1 og Seq2. Seq1: R D V N T Seq2: K I Q S Disse sekvenser skal alignes vha en dynamisk alignment algoritme, hvor alle gaps hver især koster 2 point (dvs en score på ‐2), mens substitutions‐scoren fås udfra den Blosum62 matrix der findes i Appendix 1. Du selv bestemme hvilken af de 2 hoved‐alignment typer du vælger, men skriv dit valg herunder. d1) Jeg vælger alignment type: Udfyld herefter alignment‐matrix på næste side hvor de to peptider alignes. Side 8 af 13 Alignment matrix K I Q S 0 ‐2 ‐4 ‐6 ‐8 R ‐2 D ‐4 V ‐6 N ‐8 T ‐10 d2) Skrive det færdige alignment herunder samt alignmentscoren: Side 9 af 13 5: SNP Single Nucleotide polymorphism (15%) Herunder ses sekvensen for den kodende region af et kort gen med en længde på 51 bp. Læseretningen er fra venstre mod højre. Der findes 2 SNP’s indenfor dette område, SNP1(G/T) på position 6 og SNP2(T/A) på position 15. RNA translation‐tabellen i Appendix 2 kan benyttes til nogle af spørgsmålene. SNP1 SNP2 | | ATGCAGCCTATGTGTAACGTGGTCACCCTGATCCGATCGTATGTTTTATTT a) Hvad er forskellen på en synonym (Eng: synonomous) SNP og en ikke synonym (Eng: nonsynonomous) SNP ? b) Vil SNP1 have nogen indflydelse/ændre på det protein produkt som laves og hvor langt bliver protein sekvensen (begrund dit svar) ? c) Vil SNP2 have nogen indflydelse på det protein produkt som laves og hvor langt bliver protein sekvensen (begrund dit svar) ? Side 10 af 13 6: PDB – 3Dstruktur og homologi modellering (10%) a) De forskellige lag af information for et protein beskrives often med 4 ord: primær, sekundær, tertiær og kvaternær struktur. Beskriv kort betydningen af disse ord Du skal til at bygge en homologimodel af et protein. Ved hjælp af en sekvenssøgning i PDB har du fundet seks strukturer til formålet. Strukturernes kvalitetsparametre og alignment‐scorer er angivet nedenfor i Tabel 1 (side 11): b) Forklar ud fra parametrene i Tabel 1 (side 11), hvilken struktur (en eller flere) der vil være bedst at basere din model på. Begrund dit valg. Side 11 af 13 c) Forklar ud fra parametrene i Tabel 1 (side 11), hvilke tre strukturer, der vil være de dårligste valg. Begrund dit valg. Tabel1 Struktur A B C D E F Eværdi (Eng. e values) 1,0E‐09 1,0E‐02 1,0E‐10 1,0E‐12 1,0E‐11 1,0E‐10 Sekvensid (%) 80 20 81 94 95 93 Metode* X X X X N N Opløsningsevne 2,3 1,4 2,4 4,0 n/a n/a Resolution (Å) Rværdi 0,22 0,16 0,24 0,30 n/a n/a Rfree 0.29 0,20 0,27 0,35 n/a n/a RMSD** n/a n/a n/a n/a 0,3 0,4 Ramachandran 3,0 1,0 2,0 5,0 5,0 2,5 statistik (% outliers) *X = x‐ray/røntgenkrystallografi, N = NMR, **For ensemblet Side 12 af 13 Appendix 1 Blosum62 matrix Side 13 af 13 Appendix 2 RNA translation table
© Copyright 2024